Le vitamine sono essenziali per l’organismo e svolgono una vasta gamma di funzioni:

• La vitamina A (retinolo) è importante per la vista, la riproduzione, lo sviluppo embrionale, il sistema immunitario, il metabolismo osseo, l’emopoiesi e il tessuto epiteliale. Molti erbivori possono metabolizzare il β-carotene presente nella dieta in vitamina A e utilizzarlo, il che significa che le carenze sono meno comuni in queste specie.
• La vitamina B₁ (tiamina) è importante per il sistema nervoso; i disturbi neurologici causati da una carenza di tiamina sono particolarmente comuni nelle specie piscivore, poiché i batteri che sintetizzano la tiaminasi sono spesso presenti nei pesci.
• La vitamina B₂ (riboflavina) è un enzima importante per i processi ossidativi.
• La vitamina B₃ (niacina) svolge un ruolo nell’assorbimento e nella digestione dei nutrienti, nella produzione di ormoni e nella circolazione sanguigna.
• La vitamina B₅ (acido pantotenico) è importante per il metabolismo dei carboidrati e dei grassi e per la sintesi del colesterolo.
• La vitamina B₆ (piridossale) è importante per il metabolismo degli amminoacidi e dei lipidi e per la sintesi di adrenalina e noradrenalina.
• La vitamina B₇ (biotina) svolge un ruolo importante nel metabolismo dei carboidrati, dei grassi e delle proteine come cofattore per vari enzimi.
• Le vitamine B₉ (acido folico) e B12 (cobalamina) sono importanti per l’emopoiesi.

 

La maggior parte delle vitamine del gruppo B viene sintetizzata dai batteri presenti nel tratto digerente delle specie erbivore, quindi le carenze si verificano raramente in questi animali.

• La vitamina C (acido ascorbico) agisce come antiossidante ed è un importante coenzima nel metabolismo delle proteine e del collagene.
• La vitamina D, in particolare la vitamina D₃ (colecalciferolo), è importante per la regolazione di calcio, fosfato e magnesio e svolge un ruolo fondamentale nel metabolismo osseo.
• La vitamina E (tocoferolo) è un importante antiossidante e, insieme al selenio, svolge un ruolo chiave nel metabolismo dei grassi e dei muscoli. La carenza di vitamina E è stata segnalata anche in vari rettili, in particolare nelle specie carnivore come coccodrilli, serpenti, lucertole e tartarughe marine.

Una risposta comune a potenziali carenze vitaminiche è quella di aggiungere alte concentrazioni di vitamine e oligoelementi alla dieta; tuttavia, anche un’integrazione eccessiva di alcuni nutrienti può causare problemi di salute. Il caso più noto di sovraintegrazione nei rettili è l’ipervitaminosi A nelle tartarughe, che può portare a un massiccio distacco della pelle e dovrebbe essere evitato. Un’eccessiva assunzione di vitamina D può anche portare a depositi di calcio in vari organi.

La domanda successiva è come determinare se un animale riceve un apporto sufficiente di tutte le vitamine essenziali.
Questa valutazione non è semplice: bisogna prima distinguere tra due gruppi di vitamine: le vitamine liposolubili, come A, D, E e K, e le vitamine idrosolubili, tra cui B₁, B₂, B₃, B₅, B₆, B₉, B₁₂ e C. Le vitamine liposolubili vengono immagazzinate nel fegato, ma anche nel tessuto adiposo, il che significa che, da un lato, una carenza non porta immediatamente a segni clinici, ma, dall’altro, sono necessari campioni di organi come le biopsie epatiche per valutare correttamente il bilancio vitaminico di un animale.
Uno studio sui calopsiti (Nymphicus hollandicus) ha dimostrato che gli uccelli non sviluppavano carenze cliniche nemmeno dopo due anni senza vitamina A nella loro dieta (Koutsos et al. 2003).
Tuttavia, l’accumulo di vitamine liposolubili aumenta anche il rischio di intossicazione, poiché queste vitamine possono accumularsi nell’organismo nel tempo se assunte in quantità eccessive e costanti. Al contrario, le vitamine idrosolubili vengono immagazzinate nell’organismo solo per un breve periodo (in genere pochi giorni), il che significa che le carenze possono svilupparsi più rapidamente, mentre le intossicazioni sono meno comuni, perché le quantità in eccesso vengono prontamente escrete, spesso attraverso le urine, come accade con la maggior parte delle vitamine del gruppo B e la vitamina C.

Un modo per determinare lo stato vitaminico è misurare i livelli di vitamina nel sangue; tuttavia, è opportuno notare che tali misurazioni riflettono solo le concentrazioni circolanti al momento del campionamento, che sono influenzate dall’assunzione alimentare recente e dal rilascio dalle riserve corporee.
Negli uccelli e nei rettili, ci sono anche diversi fattori che devono essere considerati quando si interpretano i livelli di vitamine nel sangue.
Ad esempio, i nostri studi hanno dimostrato che l’accesso alla luce solare naturale ha un effetto positivo sui livelli di vitamina D nel sangue di testuggini e testuggini terrestri (Testudo hermanni e Trachemys scripta) (Geisler et al. 2023) e pappagalli cenerini africani (Psittacus erithacus).

Anche la dieta influenza chiaramente i livelli di vitamine nel sangue: ad esempio, i livelli di vitamina D nel sangue dei pappagalli cenerini africani erano più elevati quando venivano alimentati con vari integratori. Nelle testuggini si sono osservate anche differenze stagionali, con livelli più elevati di vitamine B₁, B₂ e B₆ nelle testuggini di Hermann (Testudo hermanni) misurati in estate. Una spiegazione è che gli animali non ingeriscono alcun nutriente in inverno a causa del letargo e i livelli di vitamine sono quindi molto bassi in primavera, per poi aumentare in estate a causa dell’aumento dell’apporto alimentare. Nel corso dell’estate, tuttavia, il contenuto di nutrienti nelle piante cambia (la proporzione di fibra grezza aumenta), così come lo spettro vegetale consumato, per cui i valori diminuiscono nuovamente in autunno. Anche il sesso influenza i livelli ematici di alcune vitamine. Ad esempio, abbiamo scoperto che le femmine di testuggine di Hermann presentavano livelli inferiori di vitamine A, B₁ e B₂, ma livelli più elevati di vitamina E rispetto ai maschi. Valori più elevati di vitamina E sono stati riscontrati anche nelle femmine di tartaruga palustre (Trachemys scripta) (Leineweber et al. 2025). La ragione di ciò potrebbe essere dovuta alle differenze metaboliche tra i sessi indotte dagli ormoni e al fatto che le femmine incorporano vitamine e altri nutrienti nell’uovo durante la vitellogenesi. Questi fattori rendono difficile stabilire intervalli di riferimento per ciascuna specie. Tuttavia, una misurazione può essere utile, soprattutto in caso di sospetta ipo- o ipervitaminosi, per confermare il sospetto e monitorare l’andamento della terapia.

Offriamo ora un nuovo profilo vitaminico per uccelli e rettili che include le vitamine A, D₂, D₃ ed E. Si richiedono 500 μl di siero o plasma eparinato. Anche l di siero o plasma eparinato. Anche altre vitamine possono essere misurate singolarmente.

 

Dott. Christoph Leineweber

L’ammonio e l’ammoniaca sono molto volatili e devono pertanto essere determinati il più rapidamente possibile in un campione di sangue per ottenere valori accurati, motivo per cui una misurazione corretta non è possibile se il campione deve essere inviato a un laboratorio.

Nei mammiferi ci sono una serie di analiti aggiuntivi utilizzati per valutare la funzione renale, come la creatinina, la dimetilarginina simmetrica (SDMA), la cistatina C, il solfato di indossile, il fattore di crescita dei fibroblasti (FGF23) e, negli esseri umani, la N-acetil-β-d-glucosaminidasi (NAG).

La creatinina viene prodotta ed escreta da rettili e uccelli solo in piccole quantità, molto variabili, rendendola inadatta come marcatore diagnostico affidabile in queste specie. Negli uccelli, il precursore creatina fosfato viene escreto nelle urine.

Ci sono diversi studi disponibili sulla SDMA in animali esotici. Uno studio sulle tartarughe di Hermann (Testudo hermanni) (Lehmann et al. 2022) ha mostrato che il SDMA è misurabile in questa specie e ha stabilito intervalli di riferimento. Studi interni non pubblicati da Laboklin hanno dimostrato che il SDMA aumenta con l’aumento dei livelli di acido urico nelle tartarughe di Hermann con malattia renale. Un altro studio è stato in grado di stabilire intervalli di riferimento per il SDMA nelle amazzoni di Hispaniola (Amazona ventralis) e nei pappagalli quaccheri (Myiopsitta monachus) (Moreno et al. 2024), ma non ci sono ancora dati sugli animali clinicamente malati.

La cistatina C è stata testata come marcatore per il danno renale acuto nei polli (Konopska et al. 2013).

Ci sono diversi studi sul NAG negli uccelli, che indicano che questo potrebbe essere adatto come marker per il danno renale acuto (Wimsatt et al. 2009; Dijkstra et al. 2015).

Tuttavia, nella maggior parte dei casi clinici che coinvolgono uccelli e rettili, la malattia renale cronica è più comune (Figura 2), rendendo questi marcatori solo moderatamente adatti. Attualmente non ci sono studi disponibili su altri possibili analiti renali negli uccelli e rettili. Anche la diagnostica di laboratorio per le malattie renali negli anfibi e nei pesci è ancora in una fase iniziale.

Oltre al numero limitato di analiti disponibili per valutare la funzione renale in uccelli, rettili, anfibi e pesci, i valori ematici di marcatori renali noti sono anche influenzati da vari fattori.

L’urea e l’ammoniaca sono influenzate dallo stato di idratazione, dall’assunzione di cibo, dalla funzione epatica e dalla funzione renale. In alcuni animali del deserto, l’urea è fisiologicamente più alta nel sangue rispetto alle specie provenienti da habitat più umidi.

L’acido urico aumenta anche a causa della disidratazione, dell’assunzione di cibo (soprattutto nelle specie carnivore) e della diminuzione delle temperature ambientali nei rettili.
D’altra parte, l’anoressia, la riduzione o l’assenza di assunzione di cibo, le malattie epatiche massicce e il trattamento con allopurinolo portano a una riduzione delle concentrazioni ematiche di acido urico.

L’età di un animale (Stacy et al. 2000), il sesso (Leineweber et al. 2019; Stacy et al. 2000), il tipo di allevamento (Padilla et al. 2011) e la stagione (Laube et al. 2016; Leineweber et al. 2019; Yang et al. 2014) possono influenzare anche le concentrazioni di analiti associati ai reni nel sangue. L’analisi del sangue dovrebbe quindi essere eseguita su animali che hanno digiunato, sono normotermici e prima o dopo la terapia fluida a seconda dello stato di disidratazione dell’animale.

La malattia renale spesso porta ad azotemia e iperosmolarità. Può anche causare ipercolesterolemia, iperfosfatemia, ipocalcemia, ipercloremia, iponatriemia, iperkaliemia e livelli aumentati di aspartato aminotransferasi (AST). In alcuni casi, i livelli di gamma-glutamiltransferasi (GGT) possono anche essere elevati, e alcuni animali colpiti possono essere anemici.

Negli specie che hanno una vescica urinaria, come le tartarughe europee, l’urina può essere ottenuta tramite cistocentesi e analizzata. Tuttavia, è importante notare che l’urina degli ureteri non entra direttamente nella vescica ma passa prima attraverso la cloaca, il che può introdurre contaminanti che influenzano i risultati. Inoltre, nei cheloni, per esempio, l’acqua viene sia riassorbita dalla vescica che assorbita e immagazzinata tramite la cloaca durante il bagno, il che influisce sulla densità specifica dell’urina.

 

Conclusione

La diagnosi delle malattie renali negli uccelli e negli animali esotici è impegnativa. La selezione degli analiti ematici appropriati per i test di laboratorio dipende dal modo di vivere e dalla fisiologia delle rispettive specie.

 

I nostri test per animali esotici

• Profilo volatili
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Dott. Christoph Leineweber