Per avere un esito attendibile nella rilevazione degli agenti patogeni mediante gli esami batteriologico e micologico (coltura) o tramite la metodica PCR (Polymerase Chain Reaction), sono importanti sia una adeguata raccolta di materiale che un corretto invio.

I campioni dovrebbero essere prelevati in modo che non avvenga alcuna contaminazione con la flora fisiologica. Le informazioni sulla specie animale e sulla sede del prelievo sono importanti in quanto è possibile e necessario in alcuni casi utilizzare speciali terreni per la coltivazione di determinati batteri.

Strisci

Per l’esame colturale sono necessari tamponi con terreno di trasporto. Per batteri che sono coltivabili con difficoltà è da  preferire  un terreno di trasporto con carbone (p.es. per Taylorella equigenitalis).

Se la rilevazione dell’agente patogeno non avviene tramite coltura ma tramite PCR, è necessario utilizzare un tampone senza terreno di trasporto (p.es. per Clamidia e Micoplasmi).

Per alcuni agenti patogeni sussiste  la possibilità di rilevarli per mezzo di una coltura o di una PCR. A seconda del metodo scelto è necessario inviare il tampone apposito (p.es.: Taylorella equigentialis, Streptococcus equi equi, Rhodococcus equi, Bordetella).

Conservazione e trasporto: a temperatura ambiente.

Particolarità

• Ascessi: il rilevamento colturale è difficoltoso in quanto agenti patogeni già danneggiati o fagocitati non crescono. La cosa migliore sarebbe prelevare con un tampone un campione dell’interno della capsula ascessuale. È raccomandabile anche ricercare gli anaerobi che devono essere richiesti a parte.

• Taylorella  equigenitalis (CEM):  per l’esame colturale necessitiamo di un tampone con terreno di trasporto con carbone. Il trasporto dovrebbe avvenire con temperatura refrigerata ma non congelata (siberino avvolto nella carta assorbente). La PCR non è riconosciuta come esame per esportazione.

Liquidi

I liquidi prelevati da localizzazioni sterili (articolazioni, liquido cerebrospinale, cavità addominale) andrebbero conservati a temperatura ambiente, i liquidi prelevati da localizzazioni non sterili andrebbero conservati refrigerati.

Puntati, secreti, lavaggi broncoalveolari

• Se in piccole quantità, vanno prelevate con un tampone e questo va inviato nel terreno di trasporto; grandi quantità possono essere raccolte e inviate in una provetta sterile.
• La ricerca per Actinomiceti e Nocardia deve essere richiesta a a parte.

Urine

Per la raccolta delle urine, la metodica tramite cistocentesi è quella da preferire. Altre possibilità sono tramite catetere sterile o la raccolta del getto dell’urina.

L’urina può venire inviata in un contenitore sterile o con l’uricult. È chiaramente possibile anche l’invio di un tampone di urina con terreno di trasporto. In questo caso però non potrà seguire la conta degli agenti patogeni.

Peli e croste per la ricerca di dermatofiti

Peli con bulbo pilifero e croste vanno prelevati dalla zona periferica della lesione cutanea.

Tali campioni vanno posti ed inviati in buste di carta o fogli di alluminio puliti.

Feci

Per molti profili è consigliato inviare il contenitore per feci riempito per i ¾

La conservazione deve avvenire normalmente a temperatura ambiente ma se la raccolta avviene nel fine settimana o nella stagione calda allora il campione deve essere conservato refrigerato. In caso di sospetto di Salmonella le feci non vanno refrigerate.

Emocoltura

Il prelievo e riempimento delle bottiglie per emocoltura e la loro conservazione devono avvenire a temperatura ambiente.

Il prelievo di sangue dovrebbe avvenire nel corso di un episodio febbrile. È consigliato l’invio di 2-3 bottiglie per emocoltura (prelievi in diversi momenti, ad intervalli minimi di 1 ora).

La ricerca avverrà sia per batteri aerobi che anaerobi.

Igiene

Controllo della disinfezione delle superfici

Su richiesta vengono inviate speciali piastre con agar. Dopo la pulizia e la disinfezione della superficie, le piastre vengono posizionate per 1-2 minuti con la superficie con agar sulla superficie da esaminare.

Controllo degli sterilizzatori

Su richiesta vengono inviati i bioindicatori. Questi (vanno mantenuti nella confezione blu nella quale si trovano) vengono aggiunti al materiale da sterilizzare e sterilizzati insieme a questo. Il controllo positivo non deve essere sterilizzato.

Materiale per l’invio

Tamponi con e senza terreno di trasporto possono venire richiesti gratuitamente.

Le bottiglie per emocoltura hanno un costo aggiuntivo. Per il loro invio necessitiamo di un ordine scritto.

Tempistica per la refertazione

La ricerca di agenti aerobi normalmente necessita di 2-3 giorni mentre la ricerca per agenti anaerobi necessita di 1 settimana.

L’esame micologico ha una durata di 7 giorni; la tempistica per l’analisi di peli o tamponi cutanei per dermatofiti arriva fino a 4 settimane.

Esame colturale per Taylorella equigenitalis: il periodo di incubazione richiesto per l’esportazione in Canada è di 14 giorni, in Norvegia è 21 giorni, altrimenti è di 7 giorni.

Costi aggiuntivi

La differenziazione degli agenti patogeni tramite MALDI-TOFF è compresa nell’esame batteriologico. La differenziazione sierologica (p.es. nel caso  di Salmonelle), l’allestimento dell’antibiogramma così come la determinazione di agenti patogeni multiresistenti (p.es. MRSA, ESBL) hanno un costo aggiuntivo.

Introduzione

Nel corso di alcune malattie o durante la somministrazione di alcuni farmaci, può/deve essere eseguito un monitoraggio della terapia. Questo controllo consiste in primo luogo nel determinare i livelli del farmaco come per esempio durante la somministrazione di antiepilettici. Livelli troppo alti di farmaco possono verificarsi per esempio anche in cani con il difetto genetico di MDR1, rilevante per esempio nel corso di terapie oncologiche. Ma il monitoraggio terapeutico può consistere anche nella determinazione di ormoni endogeni la cui formazione può venire influenzata dai farmaci. Così possono venire evitati iper- o ipo-dosaggi ed i conseguenti gravi effetti collaterali.
In secondo, luogo specifici livelli sierici del farmaco sono necessari per ottenere una terapia efficace.

Ipotiroidismo nel cane

Dopo aver diagnosticato un ipotiroidismo nel cane, diversi sono i farmaci a disposizione del medico veterinario.

Dosaggio:

• 2 x die 10µg/kg p.v. – Canitroid®
• 1 x die 20µg/kg p.v. – Leventa®

Monitoraggio della terapia:

• almeno 4 settimane dall’inizio della terapia
• prelievo di sangue 4 ore dopo la somministrazione del farmaco
• misurazione della tiroxina totale (T4) nel siero

Una settimana dopo l’inizio della terapia si dovrebbe avere un miglioramento del quadro clinico con aumento dell’attività dell’animale; per osservare un miglioramento di altri sintomi come alterazione del mantello o perdita di peso dovremo attendere settimane o mesi. Un livello sierico stabile viene raggiunto solamente dopo diverse settimane di trattamento.

Avvertenza:
il valore della T4 dovrebbe essere compreso tra i parametri di riferimento di 1,3 e 4,5 µg/dl. Se dovesse risultare un valore troppo basso, si può provare ad aumentare la dose. Tenere conto che anche gli anticorpi sono responsabili di un valore ulteriormente ridotto. In questo caso sarebbe eventualmente da prendere in considerazione un cambio di terapia o una preparazione mista con triiodotironina.

Ipertiroidismo nel gatto

Per il controllo terapeutico dell’ipertiroidismo, i gatti devono aver iniziato il trattamento da alcuni giorni. Allo stesso tempo bisognerebbe misurare non solo la tiroxina totale (T4) ma anche i valori renali di urea e creatinina. Dietro ad un ipertiroidismo di  può nascondere una insufficienza renale cronica.

Dosaggio:

• tiamazolo (Felimazole®):
  2 x die 2,5 – 5 mg/gatto,
  Un aumento del dosaggio è possibile a dosi di 2,5 mg

• carbimazolo (Vidalta®):
  1 x die 10 – 15 mg/gatto,
  Un aumento del dosaggio è possibile a dosi di 5 mg

Monitoraggio della terapia:

• 10 giorni dopo la prima somministrazione di carbimazolo (Vidalta®)
• 3 settimane dopo la prima somministrazione di tiamazolo (Felimazole®)
• In seguito ogni 2 – 4 settimane fino ad un valore stabile della tiroxina totale nel siero

Il valore della  tiroxina dovrebbe rimanere nell’intervallo dei valori di riferimento, tra 0,9 e 2,9 ug/dl. Infine il monitoraggio dovrebbe avvenire dopo tre-sei mesi. Il campione di sangue può essere prelevato indipendentemente dal momento della somministrazione del farmaco; è necessario un campione di siero. I valori renali dovrebbero quindi essere sempre determinati insieme al valore del T4 per modificare eventualmente la dose di farmaco tireostatico.

Sindrome di Cushing nel cane

Qualunque sia la causa – adrenergica o ipofisaria – è approvato come trattamento per il cane il trilostano (Vetoryl®). Poiché i pazienti reagiscono molto individualmente al dosaggio raccomandato, è obbligatorio un attento monitoraggio.

Dosaggio:

• Vetoryl®: 1 x die 2 mg/kg p.v., in base alle combinazioni disponibili dei formati delle È possibile aumentare la dose fino ad un massimo di 1 mg/kg p.v..

Monitoraggio della terapia:
Il controllo della terapia viene eseguita per mezzo di un test di stimolazione con ACTH, il primo controllo deve avvenire 10 giorni dopo l’inizio della terapia, poi a 4 e a 12 settimane dopo l’inizio del trattamento o dopo l’aggiustamento della dose. Se il cane risponde bene alla dose somministrata, i controlli devono essere effettuati ogni 3 mesi.

Test di stimolazione con ACTH:

• prelievo di sangue, determinazione del cortisolo basale nel siero
• iniezione di ACTH (Synacthen®): 5 µg/kg p.v., e.v. o i.m.
• prelievo di sangue 1 ora dopo, determinazione del valore di stimolazione del cortisolo nel siero

Valutazione:
Il valore del cortisolo post-stimolazione in un cane sotto terapia con Vetoryl® dovrebbe risultare tra 18 e 73 ng/ml. Se il valore di stimolazione risulta maggiore, ma i sintomi clinici come PU/PD e polifagia si sono normalizzati, la dose di Vetoryl® può essere mantenuta. Nel caso in cui i sintomi clinici persistano invece, sarà necessario aumentare la dose. Se il valore di stimolazione risulta inferiore a 10 ng/ml, sussiste il rischio di M. Addison, quindi la dose dovrà essere ridotta. Successivamente dovrà avvenire un controllo utilizzando il test di stimolazione con ACTH da circa 10 a 14 giorni dopo la riduzione della dose.

Epilessia

Imepitoina (Pexion®):

Dosaggio:

• dosaggio iniziale: 2 x die 10 mg/kg p.v.
• dose massima 2 x die 30 mg/kg p.v.

La dose deve essere regolata a seconda della frequenza delle crisi, una determinazione del livello del farmaco non è significativa a causa della breve emivita dell’imepitoina nel sangue.

Fenobarbital (Luminale®, Phenoleptil®):

Dosaggio:

• 2 x die 3 mg/kg p.v. fino ad una dose massima di 2 x die 5-15 mg/kg p.v.

Monitoraggio della terapia:
3 settimane dopo l’inizio della terapia, da questo momento si può considerare costante il livello del farmaco nel sangue. Il campione di sangue può essere prelevato indipendentemente dal momento della somministrazione del farmaco, i livelli del farmaco dovrebbero risultare tra 20 e 30 ug/ml.
Dato che la somministrazione di fenobarbitale può portare ad un aumento dei valori epatici e può indurre una pancreatite, dovrebbero essere controllati anche sia gli enzimi epatici che i trigliceridi.
Se, nonostante valori di controllo accettabili, abbiamo ancora ulteriori attacchi epilettici, può venir presa in considerazione una combinazione con il potassio bromuro (Libromide®).

Potassio bromuro (Libromide®):

Dosaggio:

• monoterapia: 2 x die 30-40 mg/kg p.v.
• terapia in combinazione con fenobarbitale: 1 x die 30 mg/kg p.v.

Il primo monitoraggio della terapia può avvenire solo dopo circa 3 mesi dall’inizio del trattamento dato che solo allora avremo una concentrazione sierica stabile che dovrà risultare tra i 1200-3000 ug/ml. Si misura il bromuro nel siero, il momento del prelievo sarà indipendentemente dal momento della somministrazione del farmaco. Dato che il potassio bromuro è escreto per via renale, la sua somministrazione è da prendere in considerazione soprattutto in pazienti con danno epatico. Per i gatti il bromuro di potassio non è adatto a causa del ristretto indice terapeutico.

Ciclosporina A (Atoplus®, Sporimmune®, Cyclavance®)

Questo principio attivo è utilizzato in caso di atopie e di altre malattie immuno-mediate. Oltre al suo effetto desiderato di immuno-soppressione, può indurre un diabete di tipo II a causa della insulino-resistenza. Come effetto collaterale aggiuntivo per i proprietari, può causare anche iperplasia nella zona della bocca.

Dosaggio Terapia iniziale:

• cane: 1 x die 5 mg/kg p.v.
• gatto: 1 x die 7 mg/kg p.v.

Terapia di mantenimento:

• cane: 5 mg/kg p.v. ogni 2-4 giorni
• gatto: 7 mg/kg p.v. ogni 2-4 giorni

Monitoraggio della terapia:
1-2 giorni dopo l’inizio del trattamento; il campione di sangue viene prelevato prima della somministrazione del farmaco per determinarne il livello minimo. Deve essere inviato necessariamente sangue intero in EDTA. Altri farmaci possono influenzarne notevolmente la farmacocinetica e quindi i livelli di attività. A seconda del quadro clinico dovrebbe quindi venire controllato periodicamente il livello del farmaco che nel cane dovrebbe risultare tra i 100 e 500 ng/ml e nel gatto tra i 250 e i 1000 ng/ml. A causa del rischio di diabete mellito sopra descritto, dovrebbero venire misurati regolarmente anche il glucosio e le fruttosamine.

Terapia di pazienti oncologici

Le mutazioni del gene MDR1 influenzano in molte razze, soprattutto nel caso dei cani da pastore, il metabolismo non solo della loperamide ma anche di numerosi altri farmaci. Si raccomanda in questi casi l’esecuzione del test genetico per la rilevazione / esclusione della mutazione MDR1. Nel caso di animali portatori della mutazione spesso è sufficiente una riduzione del dosaggio del farmaco del 10-15%, soggetti invece omozigoti affetti devono essere trattati con una riduzione del suo dosaggio del 25-30%.

Farmaci coinvolti:

1. antracicline: doxorubicina, daunorubicina, epirubicina
2. altri antibiotici antitumorali: dactinomicina, mitoxantrone
3. alcaloidi della Vinca: vincristina, vinblastina, vinorelbina
4. podofillotossina: etoposide
5. taxano: docetaxel, paclitaxel
6. actinomicine: dactinomicina

Il pancreas è un organo molto importante per la digestione in cani e gatti, è composto da una parte esocrina e una endocrina. Il pancreas esocrino, come ghiandola sierosa, secerne enzimi essenziali per la digestionedi tutte le classi rilevanti di sostanze nutritive. Considerato anatomicamente, il pancreas esocrino è costituito da acini e dotti. Gli enzimi vengono prodotti dalle cellule ghiandolari negli acini e sono poi immagazzinati in granuli.

1. Pancreatite

La pancreatite è un’infiammazione molto dolorosa del pancreas causata da una precoce attivazione e liberazione degli enzimi proteolitici dagli acini.

Come conseguenza abbiamo distruzione locale e sistemica dei tessuti provocata dagli enzimi pancratici stessi ed anche per mezzo di mediatori dell’infiammazione che vengono liberati durante il processo. Vengono colpiti principalmente cani e gatti di media età / anziani. Abbiamo anche alcune predisposizioni di razza: Schnauzer nano, Yorkshire Terrier, Barbone. Nei gatti il Siamese sembra la razza più colpita.

Il verificarsi della pancreatite nei piccoli animali è nota da tempo. Inizialmente i segni di infiammazione del tessuto pancreatico sono stati osservati più facilmente casualmente durante le necroscopie di cani e gatti. Ciò ha portato a supporre che la pancreatite in cani e gatti si verificasse molto più spesso di quanto si pensasse. Molti gruppi di ricerca hanno contribuito ad una migliore comprensione di questa malattia, ma nonostante ormai sia riconosciuto che le malattie del pancreas esocrino, in particolare la pancreatite, sono molto più comuni in cani e gatti di come si pensava originariamente, la loro diagnosi clinica e trattamento non sono diventati più facili.

La natura dei sintomi è molto aspecifica, possiamo avere anoressia, vomito, dolore addominale, debolezza, diarrea, (ittero nel gatto), ma non tutti  i sintomi compaiono sempre insieme e nel corso di decorsi lievi possono anche non essere rilevabili alterazioni. Nel gatto i sintomi clinici sono ancora meno chiari rispetto al cane. La pancreatite dovrebbe quindi venire presa in considerazione nelle diagnosi differenziali in tutti i casi di disturbi gastrointestinali.

2. Pancreatite diagnosi / diagnostica ‒ di laboratorio

Emocromo e biochimico mostrano solitamente solo alterazioni aspecifiche che sono da ricondursi eventualmente alla presenza di vomito e diarrea. Queste alterazioni non aiutano nella diagnosi ma sono utili per valutare lo stato di salute del paziente.

2.1 Amilasi / Lipasi

Questi due enzimi non sono specifici del pancreas ma li ritroviamo anche nell’intestino, nella muscolatura, nelle ghiadole salivari e nel fegato. La sensibilità della lipasi nel cane è del 55% circa. Un aumento della lipasi di circa 3 volte è relativamente specifica nel cane ma possiamo avere una pancreatite anche se l’attività della lipasi non risulta aumentata. Nel gatto amilasi e  lipasi sono  ancora meno specifiche che nel cane. Entrambi  questi enzimi possono essere aumentati nel corso di patologie a fegato e reni, neoplasie o dopo somministraztione di glucocorticoidi e chetoacidosi diabetica.

Istologia

L’esame microscopico di sezioni di tessuto dopo fissazione in formalina (10%) e inclusione in paraffina, è utile p.es. per la diagnosi di tumori, disturbi di organi/cute o infiammazioni e infezioni.

Tutti i preparati vengono colorati come da metodica standard con H.E. (ematossilina-eosina). A seconda della necessità sono disponibili numerose colorazioni speciali (p.es. per il rilevamento di funghi, micobatteri, mastociti).

Precauzioni da prendere nel prelievo/invio dei campioni:

• inviare un numero sufficiente di campioni rappresentativi
• evitare artefatti che possono influenzano l’esame istologico: elettrocoagulazione, lacerazioni, contusioni, autolisi
• dimensione ideale del campione: 0,4 – 1,0 cm (tessuto sufficiententemente grande per la valutazione, abbastanza piccolo da permettere un fissaggio corretto; in caso di dubbi o necessità particolari contattateci). La valutazione dei margini del campione richiede es. l’invio del campione in toto.
• la fissazione in formalina è essenziale! Il rapporto tra volume di formalina e grandezza del tessuto dovrebbe essere di 1:10, meglio se di 1:20. Non utilizzare altre sostanze come es. alcool, meglio in questi casi inviare il campione non fissato (24 ore solitamente non costituiscono un problema). Se la temperatura esterna scende sotto 0°C, aggiungere una piccola quantità di alcool per evitare il congelamento del campione.
• l’anamnesi è fondamentale (compilare il modulo di richiesta esami): es. specie, età, trattamenti eseguiti, quadro clinico, localizzazione del prelievo, domande, diagnosi differenziali
• per un campione correttamente inviato e fissato, il referto da parte del laboratorio viene emesso il giorno lavorativo successivo (dal lunedì al venerdì) a quello del ricevimento del campione. Eccezioni si possono avere nel caso di campioni non fissati o duri (che quindi devono essere decalcificati) oppure nel caso in cui siano necessarie colorazioni speciali.

Citologia

L’esame microscopico di campioni posti su vetrino, dopo asciugatura all’aria, è utile per la valutazione delle cellule (cellule infiammatorie, tumorali, cellule di organi).

I vetrini vengono colorati secondo le procedure standard con la colorazione di Pappenheim. È comunque possibile anche la valutazione di campioni inviati già colorati con Diff-Quick®. In caso di necessità vengono eseguite colorazioni speciali (p.es. per funghi, micobatteri, rame).

Precauzioni da prendere nel prelievo/invio dei campioni:

• tecniche possibili: striscio per aspirazione / punzione, per apposizione, mediante l’utilizzo di cytobrush o tamponi
• per evitare l’autolisi (per lo più in caso di prelievi di urina e liquor) i preparati citologici dovrebbero essere preparati direttamente in clinica
• evitare gli artefatti, in particolare strisci troppo spessi o che vengono schiacciati
• asciugare gli strisci all’aria, non utilizzare calore, non coprirli
• inviare insieme ai vetrini anche i puntati/fluidi prelevati
• centrifugare i fluidi prelevati poveri di cellule (chiari) e strisciare il sedimento su uno o più vetrini (indicare “sedimento” nel modulo di richiesta esami)
• fluidi prelevati con presenza di sangue dovrebbero essere inviati in provette con EDTA per evitare la coagulazione
• indispensabile indicare l’anamnesi (compilare il modulo di richiesta esami)
• i referti citologici vengono emessi solitamente il giorno stesso dell’arrivo del campione al laboratorio (dal lunedì al venerdì)

Il costo di un esame istologico o citologico dipende dal tipo di campioni inviati / dal numero di diagnosi. P.es.: l’invio di numerose biopsie cutanee nel caso di un problema dermatologico verrà fatturato come un esame singolo. Nel caso in cui insieme venga inviato anche un tumore, avremo un costo doppio.

Il materiale necessario all’invio di questi campioni (moduli, contenitori con formalina, vetrini, materiale per l’invio tramite corriere) possono venire richiesti gratuitamente.

Nel caso ci sia bisogno di esami aggiuntivi, dovrà essere inviato il materiale idoneo,  p.es.  tamponi con terreno di trasporto per un esame batteriologico.

Immunoistochimica

Obiettivo: rilevare gli antigeni per mezzo di anticorpi nelle sezioni dei blocchi di paraffina, dopo valutazione istologica. L’immunoistochimica completa l’esame istologico nel caso di tumori e nel caso di necessità di rilevazione di agenti infettivi nei tessuti. Questo esame non è adatto per la diagnosi di malattie autoimmuni.

Rilevamento dell’origine cellulare in casi di tumori, p.es.:

• citocheratina (tessuto epiteliale)
• vimentina (tessuto mesenchimale)
• melan A (melanociti)
• CD2/CD79a (linfociti T/B)

Esame dei pattern di espressione per indicazioni prognostiche/terapeutiche, p.es.:

• c-Kit, Ki-67 (mastocitoma nel cane)
• Cox-2 (tumori della vescica e dell’intestino)

Rilevamento di agenti infettivi nei tessuti, p.es.:

• Herpesvirus felino, Parvovirus, FIP

Clonalità / PARR

Una grande importanza ha acquisito il test PARR (PCR for Antigen Receptor Rearrangement), un esame di biologia molecolare per determinare la clonalità linfocitaria in cani e gatti.

Nel caso in cui venga rilevata una proliferazione monoclonale delle cellule B o T, è molto probabile un linfoma che trae origine da uno di questi particolari cloni.

Il grande vantaggio di  questa tecnica è  che possono essere utilizzate direttamente le cellule sospette (da un blocco di paraffina o da un vetrino colorato o meno) senza necessità di un nuovo prelievo. Per questo esame sono adatti tessuti/fluidi prelevati, incluso il sangue, nei quali i linfociti risultino abbondanti.

Nel campo della diagnostica clinica la PCR-reazione a catena della polimerasi ha fatto breccia già da tempo guadagnando sempre più importanza. Così, con l’aiuto di esigue quantità di DNA che andiamo ad amplificare, riusciamo a trovare il patogeno ricercato nel campione di materiale appropriato nel più breve tempo possibile e senza problemi. Inoltre, data l’elevata specificità della  PCR,  l’amplificazione viene effettuata solo se la specifica sequenza che ricerchiamo viene rilevata realmente.

Decisiva per avere successo nella ricerca del patogeno tramite PCR è tuttavia anche la scelta del materiale corretto. Non tutti i patogeni si trovano nel sangue o vengono eliminati attraverso secreti / escreti.

Dermatofitosi

Le dermatofitosi si rilevano in tutto il mondo, si verificano in mammiferi, uccelli e rettili e risultano essere tra le malattie infettive più frequenti nella medicina umana. A causa della grande diversità in termini di sintomi clinici possibili, le dermatofitosi sono nel cane e nel gatto ancora difficili da diagnosticare: se da una parte vengono facilmente sopra diagnosticate, dall’altra parte non vengono affatto riconosciute.

Pertanto, in aggiunta alla classica coltura fungina, la PCR costituisce una nuova procedura diagnostica promettente.

Con la PCR vengono riconosciuti e differenziati sicuramente almeno i seguenti funghi  cutanei:  Microsporum  (M.)  canis, gypseum, M. persicolor, Trichophyton (T.) mentagrophytes e T. equinum.

La differenziazione delle specie dei dermatofiti è in conclusione possibile solo dopo un esito positivo alla PCR (rilevante p.es. per determinare la fonte dell’infezione).

Metodica: PCR, se positiva sequenziamento

Materiale richiesto: peli con bulbo, raschiati cutanei profondi, forfora, croste, unghie

Specie: cane, gatto, coniglio, cavia, cavallo e altri

Tempistica: 2-4 giorni lavorativi