La table ronde d’experts Laboklin spécialisé dans le domaine du syndrome de Cushing est désormais une institution reconnue. Trois à quatre fois par an, il se penche sur un grand nombre de questions pratiques. Des spécialistes en endocrinologie, pharmacologie et chirurgie partagent leurs connaissances sur l’état actuel de l’expérience clinique et les découvertes scientifiques relatives au syndrome de Cushing.

Les experts suivants étaient présents :
Prof. Dr Wolfgang Bäumer, Dipl. ECVPT, directeur de l’Institut de pharmacologie et de toxicologie du département de médecine vétérinaire de l’université FU Berlin ; Prof. Dr Nadja Sieber-Ruckstuhl, Dipl. ACVIM et ECVIM-CA, responsable du service d’endocrinologie, clinique de médecine des petits animaux, Université de Zurich ; PD Dr Astrid Wehner, Dipl. ECVIM-CA, médecin-chef en médecine interne spécialisée en endocrinologie, LMU Munich ; PD Dr Florian Zeugswetter, directeur du service d’endocrinologie, clinique universitaire pour petits animaux de Vienne ; Dr Pieter Nelissen, Dipl. ECVS, spécialiste RCVS, directeur général et médecin-chef en chirurgie, Frontier Kleintierspezialisten Hergolding.

Le Dr Zeugswetter commence par une introduction sur la nomenclature actuelle du syndrome de Cushing : il explique que la Société européenne d’endocrinologie vétérinaire (ESVE) s’est mise d’accord sur une standardisation des termes dans le cadre d’un projet (« ALIVE »). Il a été convenu de désigner sous le nom de syndrome de Cushing (SC) les maladies provoquées par un excès de substances à effet glucocorticoïde. On distingue les formes iatrogènes et le syndrome de Cushing acquis naturellement. Le SC acquis naturellement peut être subdivisé en formes dépendantes de l’ACTH et formes indépendantes de l’ACTH. Le SC hypophysaire classique fait partie des variantes dépendantes de l’ACTH. En revanche, les tumeurs corticosurrénales qui produisent des hormones de manière autonome sont indépendantes de l’ACTH. Il existe également des formes particulières, telles que le SC sous-diagnostiqué (anciennement « atypique »), qui se caractérise par des symptômes cliniques typiques sans que les tests fonctionnels établis ne permettent d’établir un diagnostic clair. Cette systématisation a pour but de faciliter la communication scientifique et d’améliorer la classification clinique.

Le prochain thème abordé lors de cette table ronde est consacré aux symptômes cliniques. La Prof. Dr. Sieber-Ruckstuhl souligne que la majorité des chiens atteints de SC présentent les symptômes classiques de polyurie et polydipsie (PU/PD) ainsi que de polyphagie. La PU/PD est présente dans plus de 80 % des cas, tandis qu’une augmentation de la consommation alimentaire survient dans plus de 50 % des cas. Elle souligne toutefois qu’une certaine proportion de patients ne présente pas ces symptômes de manière évidente. Cela s’explique notamment par le fait que les propriétaires de chiens et les vétérinaires sont de plus en plus attentifs aux signes précurseurs subtils et que les animaux concernés sont aujourd’hui souvent présentés à un stade précoce de la maladie. L’examen clinique général révèle un abdomen volumineux mais souple, une peau fine et plutôt sèche, une redistribution des graisses (par exemple, obésité tronculaire) et une atrophie musculaire.

Les participants souhaitent savoir ce qu’est une calcinose cutanée, comment la classer par rapport au SC et comment la traiter. PD Dr Florian Zeugswetter explique qu’il s’agit de dépôts de calcium dans la peau, qui se manifestent principalement dans la région du cou et du dos, mais aussi dans la région inguinale ou au niveau des extrémités. Son apparition est presque exclusivement décrite en relation avec une exposition aux glucocorticoïdes, ce qui fait de la calcinose cutanée un signe quasi pathognomonique du SC. Certaines races telles que le Staffordshire Bull Terrier, le Pitbull Terrier et le Rottweiler présentent une prédisposition particulière. Sur le plan clinique, cette altération cutanée est souvent impressionnante et peut varier en intensité. Le Prof. Dr Bäumer explique que la meilleure option thérapeutique consiste à traiter systématiquement le syndrome de Cushing. Des shampooings kératolytiques ou des solutions de DMSO (non autorisées !) sont envisagés comme mesures de soutien, même si les preuves à cet égard sont limitées.

Interrogée sur la fréquence de l’hypertension systémique chez les chiens atteints du syndrome de Cushing, PD Dr. Astrid Wehner souligne qu’environ 80 % des patients atteints de cette maladie en sont affectés. À partir d’une pression artérielle systolique de 160 mmHg, une surveillance étroite est indiquée. Les valeurs supérieures à 180 mmHg comportent un risque élevé de lésions des organes cibles, en particulier rénales et cardiovasculaires. La pression artérielle doit donc être mesurée chez tous les patients atteints du syndrome de Cushing.

PD Dr Astrid Wehner est également disponible pour une petite digression sur la protéinurie. Presque un chien sur deux atteint de SC présente une protéinurie, le rapport protéines/créatinine dans l’urine (U-P/C) est généralement entre 1 et 3. Mais une protéinurie sévère avec un rapport U-P/C nettement plus élevé est également possible. La cause exacte n’est pas claire. Chez une partie des patients, une hypertension systémique concomitante en est certainement la cause. PD Dr Astrid Wehner souligne toutefois que les données de l’étude montrent à la fois une sclérose glomérulaire et des lésions tubulaires. Néanmoins, malgré ces changements, la plupart des patients ne développent pas d’azotémie et la protéinurie ne semble pas avoir d’importance pronostique. Elle régresse souvent sous traitement efficace, mais pas dans tous les cas. PD Dr Wehner, Dr Zeugswetter et la Prof. Sieber-Ruckstuhl s’accordent à dire que la protéinurie associée au syndrome de Cushing chez le chien ne doit pas être traitée séparément.

Les chats peuvent également développer le syndrome de Cushing, bien que cela soit bien plus rare que chez les chiens. Dr. Astrid Wehner répond à la question concernant les différences par rapport aux chiens. Elle explique que la forme féline du SC est souvent associée au diabète sucré. Ce phénomène existe également chez le chien, mais pas dans la même mesure. Jusqu’à 80 % des chats atteints de SC sont également diabétiques. Sur le plan clinique, on observe principalement une polyurie et une polydipsie associées à un diabète sucré souvent difficile à traiter. Cependant, contrairement au chien, celle-ci est nettement moins prononcée chez les chats qui ne souffrent pas de diabète sucré. Comme chez le chien, une augmentation de la consommation alimentaire est un signe clinique typique du SC. Les chats atteints perdent du poids. Cette perte s’accompagne d’une diminution significative de la masse musculaire, qui est également fréquente chez le chien. Comme chez le chien, les chats présentent un abdomen pendulaire caractéristique et volumineux. La peau est fine, sèche et squameuse. C’est également le cas chez le chien atteint de SC, de sorte que chez ces deux espèces animales, les veines abdominales peuvent être particulièrement visibles. Chez le chat, cependant, ce phénomène est si prononcé qu’il en résulte une grande fragilité de la peau. Les plaies qui cicatrisent mal sont donc fréquentes et même une prise en main un peu trop brusque du chat peut provoquer de grandes déchirures cutanées. L’évolution de la maladie chez les chats est généralement insidieuse, ce qui rend le dépistage précoce difficile.
Le Dr Nelissen rapporte que les tumeurs surrénales sont légèrement moins fréquentes chez les chats que chez les chiens, mais qu’elles constituent néanmoins un diagnostic différentiel pertinent. Les tumeurs du cortex surrénal chez les chats peuvent produire de l’aldostérone ou des hormones sexuelles en plus ou à la place du cortisol. Les symptômes peuvent être très similaires, mais le diagnostic est plus difficile à établir. La professeur Sieber-Ruckstuhl explique que parfois, un changement dans le comportement sexuel, par exemple un marquage soudain chez les chats castrés ou un comportement de chaleur chez les chattes, peut être un indice. Lors de l’examen général, il convient de vérifier chez les chats suspects s’ils présentent des pointes péniennes, qui n’apparaissent normalement que chez les animaux non castrés.

Ensuite, le syndrome de Cushing iatrogène est brièvement thématisé. Il survient relativement souvent chez le chien, plus rarement chez le chat. La question est de savoir à partir de quelle dose et avec quel type de glucocorticoïdes administrés il faut s’y attendre. La Prof. Dr Sieber-Ruckstuhl souligne qu’il n’est pas possible d’y répondre de manière générale. Le SC iatrogène peut être déclenché par des doses très faibles de glucocorticoïdes, en particulier lorsqu’ils sont administrés à long terme. Il existe une sensibilité individuelle très élevée, les chiens de grande taille réagissant souvent de manière particulièrement sensible. Le test de choix dans les cas où il faut distinguer un SC iatrogène d’un SC naturel est le test de stimulation à l’ACTH. En cas de SC iatrogène, il fournit un résultat auquel on pourrait s’attendre en cas d’hypoadrenocorticisme (aucune stimulation ou stimulation dans la zone grise).

Le diagnostic du SC est un autre thème central. Il s’agit tout d’abord de la problématique du prétraitement aux glucocorticoïdes. La Prof. Dr. Sieber-Ruckstuhl indique qu’il n’existe aucune donnée valide dans la littérature concernant l’intervalle optimal entre un traitement aux glucocorticoïdes et un test fonctionnel. Celui-ci dépend du médicament, du dosage, de la durée du traitement et de la sensibilité individuelle. Chez certains patients, une réaction normale est observée après seulement une semaine, tandis que chez d’autres, cela peut prendre plusieurs mois avant que l’effet disparaisse complètement. La durée généralement indiquée est de 6 à 8 semaines. Le professeur Bäumer ajoute que de nombreux médicaments peuvent influencer les taux de cortisol : ainsi, le butorphanol augmente les taux de cortisol, tandis que des substances telles que la trazodone, le lokivetmab et le bedinvetmab peuvent les réduire, notamment en diminuant le stress et la douleur. Cela nécessite une interprétation particulièrement minutieuse des résultats des tests.

Le groupe « ALIVE » de l’ESVE déconseille explicitement la réalisation d’analyses hormonales pour le diagnostic interne.

Le Dr Zeugswetter est d’accord avec les autres experts sur le fait qu’une seule valeur basale de cortisol n’est pas suffisante pour établir un diagnostic. Chez les chiens atteints de SC, la surexposition au cortisol résulte généralement d’une fréquence accrue des pics de cortisol libérés. Une valeur sanguine déterminée de manière aléatoire peut se situer dans la fenêtre temporelle d’un pic de sécrétion ou pendant une pause. Il n’est pas possible de faire la distinction avec un patient sans SC, ni dans la marge haute ni dans la marge basse.

Le rapport cortisol/créatinine dans l’urine (UCC) peut servir d’indication initiale, mais doit toujours être complété par des tests fonctionnels. La Prof. Dr. Sieber-Ruckstuhl recommande d’analyser au moins trois échantillons individuels. Les échantillons d’urine regroupés peuvent fausser le résultat. L’urine doit être prélevée à domicile par le propriétaire. Après une visite chez le vétérinaire, il faut attendre au moins deux jours avant de commencer le prélèvement (car le stress provoqué par la visite chez le vétérinaire peut durer aussi longtemps).

Le PD Dr Florian Zeugswetter présente aux participants le test à la dexaméthasone à faible dose (LDDST) plus en détail. Ce test est généralement considéré comme le test de choix pour confirmer le diagnostic. Cependant, le LDDST est influencé par les situations dans lesquelles la sécrétion de cortisol est accrue (stress émotionnel ou lié à une maladie). Un résultat positif ne confirme donc un SC que dans le contexte d’un tableau clinique approprié et après exclusion d’autres maladies.
Après l’administration de dexaméthasone, la production physiologique de cortisol par l’organisme est réduite. On s’attend à une suppression de la concentration sérique-cortisol en dessous d’un seuil défini. Chez la plupart des patients atteints du syndrome de Cushing, cette suppression manque. La valeur sur 8 heures est principalement utilisée pour l’interprétation. Pour obtenir un résultat clair, une suppression réduite doit également être visible pour la valeur intermédiaire (généralement 4 heures). Classiquement, le test est interprété comme négatif (= absence de SC) lorsque la valeur sur 8 heures est inférieure au seuil, quel que soit le comportement de la valeur intermédiaire après 3 à 4 heures. Un résultat négatif n’est pas toujours définitif, de sorte qu’en cas de suspicion clinique persistante, il est nécessaire de répéter le test ou d’effectuer des tests alternatifs. Pour les chats, le LDDST est également la méthode de choix, mais la dose de dexaméthasone doit être ajustée à 0,1 mg/kg (soit dix fois plus que pour les chiens).

Il y a encore des questions du public concernant la réalisation du LDDST. L’une d’elles porte sur la concentration des préparations à base de dexaméthasone. Une certaine confusion règne à ce sujet, car certaines sources bibliographiques mentionnent la conversion des concentrations efficaces. Le Prof. Dr Bäumer fait explicitement référence à l’indication de la concentration en dexaméthasone sur le produit. Dans les pays germanophones, celle-ci est toujours indiquée (« correspond à x mg de dexaméthasone »). Les participants souhaitent également savoir comment procéder à une dilution pratique de la dexaméthasone chez les très petits patients. Le Dr. Zeugswetter donne ici son aide : si l’on ajoute 1 ml d’une préparation à 2 % de dexaméthasone (2 mg/ml) à 9 ml de NaCl à 0,9 % (bien mélanger), cela correspond à une quantité de principe actif de 0,2 mg/ml. Le dosage est ainsi beaucoup plus facile. Avec une concentration de dexaméthasone de 4 mg/ml, ajouter 0,5 ml de dexaméthasone à 9,5 ml de NaCl à 0,9 % pour obtenir une quantité de principe actif de 0,2 mg/ml.

En ce qui concerne le traitement, le trilostane est au premier plan. Ce médicament inhibe la synthèse du cortisol par un blocage enzymatique réversible. Le Prof. Dr Bäumer souligne que malgré la réversibilité, une nécrose irréversible du cortex surrénal peut survenir dans de rares cas, entraînant un hypoadrenocorticisme permanent. Quant au dosage, il est préférable d’administrer deux fois par jour de petites quantités plutôt qu’une seule fois par jour une dose élevée. Cela réduit le risque d’effets secondaires, en particulier chez les chiens de grande race. PD Dr Astrid Wehner recommande la prudence chez les patients atteints d’une maladie rénale chronique. La réduction du cortisol peut diminuer le taux de filtration glomérulaire et ainsi aggraver l’évolution de la maladie.
Dr. Nelissen complète les options chirurgicales : en cas de tumeurs surrénales, l’adrenalectomie est le traitement de choix, car environ 50 % des cas sont des carcinomes. Le taux de complications d’une telle opération a considérablement diminué ces dernières années grâce aux techniques chirurgicales modernes et aux progrès réalisés dans le domaine de l’anesthésie. Même en cas de rupture vasculaire, une ablation chirurgicale reste possible. Si un patient est déjà traité au trilostane, il convient d’arrêter le traitement 24 à 48 heures avant l’opération. La glande surrénale controlatérale restante est généralement atrophiée et nécessite un certain temps pour reprendre sa fonction. Après l’opération, il convient donc de prescrire une faible dose de cortisone, qui sera progressivement réduite sur une période de 4 à 6 semaines.

Le suivi a également fait l’objet d’une discussion approfondie. Le Dr Florian Zeugswetter privilégie à cet effet la détermination du cortisol avant la prise du comprimé comme option économique, à condition que l’état clinique du patient soit stable et qu’il n’y ait pas de suspicion de surdosage en trilostane. Le prélèvement sanguin est effectué peu avant la prochaine administration de trilostane recommandée. La Prof. Dr. Sieber-Ruckstuhl recommande de réaliser deux mesures à une heure d’intervalle afin de tenir compte des effets des pics aléatoires et des réactions de stress. Une mesure du cortisol est effectuée au moment de l’administration du trilostane et une heure plus tard. L’administration du trilostane n’a lieu que le jour même, après le deuxième prélèvement sanguin. Cela permet de « compenser » les concentrations élevées de cortisol induites par le stress ou les concentrations accidentellement basses, ce qui peut conduire à une meilleure évaluation du patient. PD Dr Wehner rappelle qu’une perte d’appétit ou une baisse de vitalité peuvent être des signes précurseurs d’un surdosage en trilostane. Le test de stimulation à l’ACTH offre la plus grande sécurité en termes d’évaluation d’un éventuel surdosage et doit toujours être utilisé lorsque le patient présente des symptômes cliniques. Elle souligne également que le risque d’hypoadrenocorticisme induit par le traitement augmente avec la durée du traitement. Une surveillance étroite et à vie au moyen d’une stimulation à l’ACTH ou d’une mesure du cortisol pré-pillule est donc indispensable.

Dr. Jennifer von Luckner

L’hypothyroïdie chez le chien est considérée comme une endocrinopathie classique présentant des manifestations cliniques typiques. Malgré ces symptômes apparemment clairs, son diagnostic correct représente un défi considérable. De nombreuses études rétrospectives montrent que jusqu’à 70 % des chiens traités à la lévothyroxine (L-thyroxine) ne présentent pas d’hypothyroïdie. Un écart considérable entre le taux de diagnostic et la prévalence réelle (estimée entre 0,07 et 0,23 %) souligne la nécessité d’un diagnostic plus différencié. Les maladies non thyroïdiennes (NTI), les effets des médicaments et les erreurs d’interprétation liées aux méthodes utilisées compliquent l’établissement d’un diagnostic correct.

Une initiation thérapeutique non critique à la L-thyroxine comporte le risque de négliger des maladies sous-jacentes importantes et d’augmenter inutilement la charge métabolique. En cas de maladie cardiaque concomitante ou d’hypoadrenocorticisme non traité/non diagnostiqué, cela peut entraîner une décompensation et être potentiellement fatal.

Dans cette zone d’ombre diagnostique, de nouvelles approches telles que la détermination de la T3 inverse (rT3) et l’analyse des paramètres pertinents par chromatographie liquide suivie d’une spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS) ouvrent de précieuses possibilités supplémentaires.

Les bases de la physiologie et du diagnostic thyroïdiens

La fonction thyroïdienne est régulée par l’interaction complexe entre l’axe hypothalamo-hypophyso-thyroïdien. La TRH produite par l’hypothalamus stimule la sécrétion de TSH dans l’hypophyse, qui à son tour stimule la thyroïde pour la synthèse et la sécrétion d’hormones thyroïdiennes (principalement la thyroxine (T4)). La T4 est présente dans le sérum à plus de 99 % sous forme liée aux protéines (= T4 totale). Seule la fraction libre (fT4) est absorbée par les cellules. La fT4 y est alors transformée par 5′-déiodation en T3, une hormone active au niveau cellulaire. Il peut également se produire une formation de T3 inverse, biologiquement inactive. Cela sert probablement à la régulation cellulaire et à éviter un excès de T3 active.

Selon une enquête réalisée en 2020 par l’association industrielle allemande des animaux de compagnie, 5 millions de petits animaux domestiques vivent dans 5 % des foyers allemands. Le cochon d’Inde est un représentant important de ce groupe d’animaux. Originaire d’Amérique du Sud, il a été introduit en Europe dès le XVI^e siècle par des marins espagnols. Dans son pays d’origine, il sert d’animal de rente pour la production de viande. En revanche, en Europe centrale, le cochon d’Inde domestique est élevé comme animal de compagnie. En captivité, les cochons d’Inde atteignent souvent un âge plus avancé que dans la nature. Cela entraîne inévitablement des maladies qui touchent les animaux adultes et âgés, telles que les tumeurs. Il existe peu d’articles généraux sur les tumeurs spontanées qui apparaissent chez les cochons d’Inde (Dobromylskyj et al., 2023). Cependant, l’acceptation par les propriétaires d’animaux de faire examiner et soigner leurs animaux en cas de maladie a augmenté pendant les années dernières. Afin d’obtenir une vue d’ensemble des tumeurs présentes chez les cochons d’Inde, les tumeurs envoyées à Laboklin entre 2013 et 2020 ont été évaluées. Les critères d’inclusion étaient la localisation de la tumeur et les échantillons pour lesquels un diagnostic clair était possible. Au cours de la période étudiée, ces critères ont été remplis pour 1017 tumeurs.

Ci-après, nous détaillerons les localisations de ces tumeurs, les tumeurs fréquemment diagnostiquées, la prédominance des néoplasies bénignes ou malignes et les tumeurs inhabituelles apparues chez ces animaux.

La localisation des tumeurs

Les tumeurs envoyées provenaient de localisations très diverses, les tumeurs de la peau (sous-cutanée) étant les plus fréquemment envoyées. Les tumeurs du tissu mammaire, de l’utérus et du tissu lymphatique suivaient. Des tumeurs thyroïdiennes étaient également représentées. Les modifications néoplasiques d’autres organes étaient beaucoup moins fréquentes (fig. 1). Les tumeurs situées dans la région de la peau et du tissu sous-cutané étant facilement détectables par les propriétaires lors de la toilette et des soins prodigués aux animaux, cela explique probablement pourquoi les néoplasies de cette localisation sont les plus fréquemment envoyées, tandis que les processus potentiels des organes internes ne sont pas nécessairement visibles pour le propriétaire ou nécessiteraient des opérations plus complexes.

Les diagnostics de tumeurs

Dans les échantillons envoyés, le lipome était le diagnostic tumoral le plus fréquent chez les cochons d’Inde. Les tumeurs du follicule pileux était en deuxième position. De nombreux autres diagnostics tumoraux ont pu être posés (fig. 2). Étant donné que la peau et le tissu sous-cutané dominaient en tant que localisation de prélèvement, il n’est pas surprenant que les tumeurs du tissu adipeux et les tumeurs du follicule pileux aient été les diagnostics les plus fréquents.

Le taux de tumeurs bénignes/malignes

Afin d’obtenir une meilleure vue d’ensemble du rapport entre les tumeurs bénignes et malignes, cela a été représenté schématiquement dans l’illustration suivante pour les tumeurs envoyées le plus fréquemment (fig. 3).

Les tumeurs mésenchymateuses et épithéliales (sous-cutanées) les plus fréquentes ont ensuite été classées plus précisément afin d’obtenir une meilleure vue d’ensemble et d’évaluer si les néoplasies bénignes ou malignes prédominaient.

Les tumeurs mésenchymateuses (sous-cutanées)

Chez le cochon d’Inde, les tumeurs mésenchymateuses prédominaient dans le derme (sous-cutané). Au total, 508 tumeurs mésenchymateuses ont été diagnostiquées, dont 365 étaient bénignes et 143 néoplasies ont été classées comme malignes. Les tumeurs se répartissaient comme suit : 325 lipomes, 13 fibromes, 13 fibrolipomes et 6 hémangiomes. Huit autres tumeurs bénignes ont été diagnostiquées. En outre, 80 sarcomes ont été envoyés (aucune détermination claire de la population cellulaire d’origine n’était possible). 29 fibrosarcomes, 24 liposarcomes (fig. 4) et 10 autres néoplasies mésenchymateuses malignes ont été diagnostiqués.

Les tumeurs épithéliales (sous-cutanées)

En tout, 157 tumeurs épithéliales ont été envoyées. Parmi celles-ci, 142 étaient bénignes et 15 malignes. 124 trichofolliculomes (fig. 5), 5 trichoépithéliomes, 3 pilomatricomes, 3 adénomes et 7 autres néoplasies bénignes ont été diagnostiqués. En outre, 5 adénocarcinomes, 5 carcinomes non spécifiés, 3 carcinomes épidermoïdes et 2 carcinomes des glandes sébacées ont été décrits.

On a diagnostiqué 11 lymphomes cutanés, 3 mélanomes, 1 fibropapillome et 1 carcinosarcome comme autres tumeurs (sous-cutanées).

Les tables rondes d’experts Laboklin jouissent d’une grande popularité. Cette fois-ci, elles étaient consacrées à l’anaplasmose granulocytaire chez le chien, le chat et le cheval. Nous avons résumé les faits les plus importants et les évaluations des experts. Les échanges ont été animés, axés sur la pratique et ponctués de précieuses informations issues de la clinique, du laboratoire et de la recherche.

Les experts suivants étaient présents :
Prof. Dr Reto Neiger, PhD, spécialiste EBVS + diplômé ECVIM (médecine interne), diplômé ACVIM (SAIM), directeur médical IVC Evidensia DACH ; Prof. Dr Jessica-Maximilliane Cavallieri, EBVS Specialist + Diplomate ECEIM, vétérinaire spécialisée dans les chevaux, vétérinaire spécialisée en médecine interne équine, responsable de la médecine interne du centre clinique pour chevaux, Université vétérinaire de Vienne ; PD Dr Barbara Willi, PhD, EBVS Specialist + Diplomate ECVIM (médecine interne), diplômée ACVIM. Chargée de cours et médecin-chef à la clinique pour petits animaux, faculté Vetsuisse de l’université de Zurich, spécialiste en médecine interne + maladies infectieuses, clinique vétérinaire Aarau West ; Dr Ingo Schäfer, M.Sc, Resident ECVCP, diagnostic de laboratoire Laboklin – spécialisé dans les maladies transmises par des vecteurs ; Prof. Dr Christina Strube, PhD, vétérinaire spécialisée en parasitologie, directrice de l’Institut de parasitologie de l’Université vétérinaire de Hanovre.

Les symptômes et les observations cliniques

Reto Neiger donne un aperçu introductif des signes cliniques chez les chiens atteints d’anaplasmose. Il décrit les symptômes comme étant principalement non spécifiques : la léthargie, l’anorexie et la fièvre sont fréquentes, mais on peut également observer des boiteries, des troubles gastro-intestinaux, des troubles de la coagulation et même des épanchements péricardiques. Il souligne en particulier que la boiterie se traduit souvent plutôt par une réticence générale à bouger. Ingo Schäfer remarque que l’apparition d’encéphalites chez les chiens a été décrite, même si cela est rare. Il fait référence à des cas isolés avec un agent pathogène détecté dans le liquide céphalo-rachidien. Barbara Willi ajoute que chez les chats, les symptômes sont assez peu spécifiques et que les symptômes décrits le plus souvent sont la léthargie, la fièvre, l’anorexie et une perte d’appétit. Chez le cheval, explique Jessica Cavallieri, on observe notamment une forte fièvre, une apathie et un ictère. Des ataxies et même des crises épileptiformes peuvent survenir. Des évolutions atypiques avec rhabdomyolyse ou dysphagie ont également été décrites.

Les changements typiques dans les analyses sanguines

Interrogé sur les modifications des valeurs de laboratoire, Ingo Schäfer explique que la thrombocytopénie est le résultat hématologique le plus fréquent chez le chien, mais qu’elle n’est pas toujours présente. D’autres anomalies sont l’anémie, la lymphocytose et une augmentation du taux de globulines accompagnée d’une hypoalbuminémie. Barbara Willi souligne que chez les chats, la thrombocytopénie est souvent moins prononcée et peut être mal mesurée par les agrégats plaquettaires. C’est pourquoi un contrôle microscopique est indispensable.
Jessica Cavallieri décrit que, chez le cheval, outre l’hyperbilirubinémie, on observe souvent des leucopénies ainsi que des anémies légères. Le SAA et le fibrinogène sont généralement nettement élevés, tandis que l’albumine est réduite.

La transmission et la prévalence

Interrogée sur la nature exacte des anaplasmes, Jessica Cavallieri explique qu’il s’agit de bactéries intracellulaires qui dépendent des composants des cellules hôtes. Anaplasma (A.) phagocytophilum infecte principalement les granulocytes neutrophiles (et dans une moindre mesure les granulocytes éosinophiles), ce qui explique le nom d’anaplasmose granulocytaire. Christina Strube souligne que la transmission se fait par les tiques du genre Ixodes ricinus. Bien que l’ADN d’anaplasma ait également été trouvé dans d’autres espèces de tiques, cela ne signifie pas que celles-ci agissent réellement comme vecteurs. Elle rapporte que la transmission n’a généralement lieu que 48 heures après la piqûre. Même si cette maladie se manifeste généralement au printemps, il convient de rester vigilant tout au long de l’année. Ingo Schäfer confirme que la séroprévalence est élevée. En Allemagne, elle se situe entre 20 et 30 % pour les chiens et les chevaux, avec des variations régionales. La fréquence clinique de la maladie n’a pas augmenté chez les chiens au fil des ans, rapporte Reto Neiger.
Jessica Cavallieri confirme également que le risque d’infection est omniprésent chez les chevaux dans les régions germanophones, même dans les régions de haute altitude, mais que le taux de morbidité reste relativement modéré.

Le diagnostic

Barbara Willi attire l’attention sur la surestimation des anticorps. En raison de la séroprévalence élevée, ils ne sont pas adaptés pour la détection d’une infection aiguë et pour servir de base de décision quant à la présence d’une anaplasmose granulocytaire cliniquement significative et justifiant un traitement. Un seul titre d’anticorps positif ne justifie pas un traitement. Le diagnostic doit être fondé sur une détection directe de l’agent pathogène. Reto Neiger souligne l’importance de la PCR pour l’établissement des diagnostics. En présence de symptômes cliniques, il convient tout d’abord de rechercher des morules dans un frottis sanguin, puis de réaliser une PCR. Barbara Willi explique que les morules constituent des inclusions basophiles typiques dans les granulocytes, qui peuvent servir de preuve de l’infection. La recherche de morules dans un frottis sanguin constitue un moyen rapide et indicatif de diagnostic. Elle est toutefois d’accord avec Ingo Schäfer sur le fait qu’il faut de l’entraînement pour les identifier. De plus, les morules n’apparaissent que pendant une période limitée après l’infection et peuvent facilement passer inaperçues. Jessica Cavallieri confirme que cela vaut également pour les chevaux. Un test PCR positif est indispensable pour établir le diagnostic. Un traitement basé uniquement sur la suspicion d’un anticorps positif n’est pas judicieux. Ingo Schäfer souligne également que la détermination des anticorps n’est pas forcément une aide, même en cas de résultat négatif. En cas de maladie aiguë, il peut être trop tôt pour produire des anticorps. Un titre négatif n’exclut donc pas automatiquement une infection. Les participants souhaitent savoir si un échantillon de sérum apparié avec augmentation du titre constitue une possibilité de diagnostic de l’anaplasmose. Reto Neiger voit cela d’un œil critique. L’anaplasmose granulocytaire est une maladie aiguë qui doit être traitée en conséquence pendant sa phase symptomatique. La décision thérapeutique ne peut se fonder sur une augmentation du titre détectable 2 à 4 semaines plus tard.

Le traitement et le pronostic

Interrogé sur le traitement recommandé, Reto Neiger préconise une dose de doxycycline de 5 mg/kg deux fois par jour ou de 10 mg/kg une fois par jour. Contrairement à la durée de traitement de quatre semaines souvent recommandée jusqu’à présent, le traitement ne dure aujourd’hui souvent que deux à trois semaines. Barbara Willi confirme que deux à trois semaines de traitement suffisent dans la plupart des cas. Il n’existe pas de données factuelles à ce sujet. D’un point de vue de la gestion des antimicrobiens, il est généralement souhaitable de réduire la durée des traitements.

Une vaste revue systématique de la littérature consacrée aux infections à A. phagocytophilum chez l’homme a révélé une durée moyenne de traitement de 13 jours. Il est actuellement difficile de déterminer si une durée de traitement inférieure à deux semaines est suffisante. Pour l’instant, cela n’est pas recommandé. Pour les chats, Ingo Schäfer recommande également un traitement de 21 jours à raison de 10 mg/kg SID par voie orale. Même si une amélioration clinique rapide est constatée, il convient de poursuivre le traitement jusqu’à son terme. Il est toutefois important de noter que la doxycycline doit être administrée avec un repas ou avec de l’eau. Le fait que le comprimé reste dans l’œsophage peut entraîner de graves réactions inflammatoires et des sténoses. Jessica Cavallieri explique que chez le cheval, on utilise l’oxytétracycline ou la doxycycline, tout dépendant de la situation clinique et de la tolérance. Un contrôle thérapeutique par PCR n’est pas nécessaire. Ce dernier point est également confirmé par les autres experts pour les chiens et les chats. Le succès du traitement est principalement évalué sur la base de l’amélioration des symptômes cliniques et de la disparition des modifications des valeurs laboratoires.

Tous les experts se montrent optimistes quant au pronostic. Il ne semble pas y avoir de chronicisation. Des réinfections sont toutefois possibles. Une infection par A. phagocytophilum entraîne la formation d’anticorps, mais ne semble pas conférer une immunité durable.

La prophylaxie et la protection contre les tiques

Christina Strube précise que les produits anti-tiques vendus en pharmacie vétérinaire constituent la meilleure prévention. La prudence est de mise avec les produits alternatifs vendus dans les animaleries, car certains d’entre eux n’offrent pas une protection fiable. Interrogée sur les remèdes maison populaires, tels que les extraits de lavande ou de romarin, elle se montre également critique, car ceux-ci ne permettent pas d’obtenir la protection nécessaire contre les tiques. Elle recommande plutôt d’utiliser des préparations adaptées à chaque situation individuelle après consultation d’un vétérinaire. Il est important que les produits agissent suffisamment rapidement, idéalement avant la transmission de l’agent pathogène. Une protection est également recommandée en hiver, car les tiques sont désormais actives toute l’année en raison des températures douces.
Alors qu’il existe de nombreux antiparasitaires efficaces pour les chiens et les chats, la prophylaxie contre les tiques n’est pas si simple pour les chevaux. Les préparations à base de perméthrine disponibles doivent être appliquées très fréquemment pour être efficaces en permanence. Les antiparasitaires oraux, tels qu’ils sont utilisés pour les chiens et les chats, ont une biodisponibilité défavorable chez les chevaux, de sorte qu’ils ne constituent probablement pas une alternative pour l’avenir.

Dr Jennifer von Luckner

L’importance de l’eau d’abreuvement

Seule une alimentation suffisante en eau garantit une consommation élevée d’aliments de base. C’est pourquoi l’approvisionnement en eau est un élément central de la gestion de l’alimentation. Comment puis-je m’assurer que les animaux boivent autant qu’il le faut ? Et puis-je contrôler si leur consommation d’eau est suffisante ? L’analyse des données peut-elle aider à surveiller et à garantir la consommation d’eau ?

Les analyses de l’eau d’abreuvement sont principalement effectuées dans les exploitations qui utilisent l’eau de leur puits comme eau d’abreuvement, généralement de manière régulière dans le cadre de l’assurance qualité. De même, en cas d’irrégularités dans la ration alimentaire, l’eau d’abreuvement est souvent analysée, par exemple pour déterminer comment adapter l’apport en macro-éléments et oligo-éléments lorsque l’eau d’abreuvement est riche en certains éléments. Même en cas d’incidence élevée de maladies, il est judicieux d’inclure une analyse de l’eau d’abreuvement dans la recherche des causes. Qu’est-ce qui caractérise une eau d’abreuvement de bonne qualité ? Quelle est l’importance des biofilms dans le développement des maladies ?

Nos vaches boivent-elles suffisamment ?

Les vaches laitières ont des besoins en eau particulièrement élevés. Leur organisme est composé à 80 % d’eau et leurs besoins quotidiens peuvent atteindre 170 litres par jour, selon leur âge, leur production laitière, la température ambiante et leur consommation alimentaire.

Appuhamy et al. 2016 décrivent les principaux facteurs permettant de déterminer les besoins en eau des vaches laitières comme suit :

• DMI – consommation alimentaire (kg/j)
• Milk – production laitière (kg/j)
• DM % – teneur en matière sèche de la ration
• CP % – teneur en protéines de la ration (%)
• BW – poids corporel (kg)
• TMP – Température ambiante (°C)
• Na et K – Concentration en Na et K dans la ration

L’eau joue un rôle de transporteur dans l’organisme de la vache et est très importante pour le métabolisme, la thermorégulation, la digestion, mais aussi pour les processus immunologiques. Une mauvaise qualité de l’eau entraîne une baisse significative de la consommation alimentaire. Une consommation suffisante d’eau est également essentielle pour la production laitière.

Les facteurs qui influencent la consommation d’eau sont multiples. Une conception bien pensée de l’étable, avec un nombre suffisant d’abreuvoirs assez grands et correctement placés, permet aux animaux de couvrir leurs besoins en eau à tout moment. La DLG recommande un abreuvoir pour 20 animaux et une longueur totale d’auge de 6 cm par animal. Des études montrent que cela n’est peut-être pas suffisant. Avec l’attention croissante portée à ce sujet, l’influence d’abreuvoirs mal positionnés et de la hiérarchie au sein d’un troupeau sur la réduction de la consommation d’eau d’abreuvement devient évidente (Burkhardt et al. 2025).

Mais les conditions environnementales telles que la température extérieure et la température de l’eau, ainsi que la composition physico-chimique ou les impuretés, influencent également le goût et ont donc un impact sur la quantité d’eau consommée.

En ce qui concerne les diagnostics en laboratoire, des paramètres tels que l’hématocrite et l’albumine dans le sang indiquent une consommation d’eau insuffisante.

Les technologies modernes nous permettent également d’obtenir des informations sur la quantité d’eau ingérée par les bovins. Pour cela, on utilise des micropuces sous forme de bolus ruminaux. Certaines sont capables de mesurer la température interne du rumen. Les variations de température à court terme pendant la période d’abreuvement permettent de tirer des conclusions sur le comportement d’abreuvement (par exemple Smaxtec).

Les biomarqueurs fécaux constituent un moyen précieux et non invasif d’obtenir des informations sur les processus physiopathologiques dans le tractus gastro-intestinal. Ils permettent de différencier les causes inflammatoires et non inflammatoires des entéropathies chroniques, fournissent des indications sur la perte de protéines ou aident au suivi et à la planification du traitement. Nous vous présentons ci-dessous les biomarqueurs fécaux principaux actuellement disponibles en médecine vétérinaire.

Comparées à l’apparition de tumeurs dans d’autres systèmes d’organes, les néoplasies intraoculaires sont relativement rares chez le chien et le chat. Les tumeurs primaires sont plus fréquentes que les maladies métastatiques.

Le diagnostic clinique des tumeurs intraoculaires représente souvent un défi. Contrairement aux tumeurs de la peau, les néoplasies dans l’oeil ne sont souvent pas facilement identifiables de l’extérieur. Les masses intraoculaires peuvent en outre provoquer différents symptômes cliniques en fonction des structures touchées dans l’oeil, ce qui rend le diagnostic encore plus difficile. En conséquence, même des tumeurs très petites ou bénignes peuvent avoir des conséquences dramatiques sur le fonctionnement de l’oeil. La perte ou la diminution de la vision, les lésions tissulaires et le développement d’un glaucome secondaire sont des symptômes cliniques typiques qui incitent les propriétaires d’animaux à demander un avis vétérinaire. Même si les tumeurs ont des effets différents dépendant de leur localisation anatomique dans l’oeil, les néoplasies oculaires représentent une raison fréquente d’énucléation.

Selon la littérature, les tumeurs mélanocytaires sont les néoplasies intraoculaires primaires les plus fréquentes, tant chez les chiens que chez les chats. Selon la classification de l’OMS, elles sont divisées en deux groupes : les tumeurs bénignes sont appelées mélanocytomes, tandis que les variantes malignes sont appelées mélanomes.

Dans l’oeil, l’uvée antérieure est considérée comme la localisation la plus fréquente pour le développement de tumeurs mélanocytaires intraoculaires chez les animaux (Fig. 1). Chez le chien, la plupart des tumeurs sont bénignes, alors que chez le chat, elles sont principalement considérées comme malignes. En revanche, les néoplasies mélanocytaires de l’uvée postérieure sont rares, tant chez le chien que chez le chat, et elles se comportent généralement de manière bénigne dans cette localisation.

Les caractéristiques particulières des deux entités les plus courantes chez le chien et le chat sont décrites plus en détail ci-dessous.

Mélanome irien diffus félin (FDIM)

Les tumeurs mélanocytaires représentent 67% de toutes les néoplasies oculaires primaires chez le chat. Le mélanome irien diffus félin est au premier rang des néoplasies mélanocytaires oculaires. Les mélanomes des limbes et les mélanomes atypiques constituent des variantes nettement moins fréquemment diagnostiquées. Le FDIM peut apparaître chez les chats de tout âge, l’âge moyen étant de 9,4 ans. Aucune prédisposition de race ou de sexe n’est connue. Il s’agit d’une maladie maligne dont l’aspect clinique est très variable, ce qui rend le diagnostic difficile dans certains cas, en particulier aux premiers stades de la maladie. Les lésions commencent souvent par de petits points pigmentés uniques ou multiples sur l’iris, qui sont macroscopiquement reconnaissables à des taches noires plates. Ces taches sont appelées mélanose de l’iris et sont considérées comme des précurseurs bénins de la FDIM.

La progression de la maladie est très variable et donc imprévisible. Les lésions peuvent rester inchangées pendant des mois, voire des années, alors que dans certains cas, la progression est rapide avec une croissance localement invasive et une métastase en peu de temps. Cela continue de compliquer la prise en charge clinique.

Les maladies de l’oreille chez les lapins sont un motif de consultation fréquent dans le cabinet vétérinaire des petits mammifères. Mais elles sont malheureusement aussi souvent une découverte fortuite lors de l’examen clinique. Dans la plupart des cas l’otite signifie une inflammation d’une ou plusieurs structures de l’oreille et peut être divisée, comme chez le chien et le chat, en otite externe, otite moyenne et otite interne.

Les causes

L’âge, le sexe ou les conditions de détention ont peu d’influence sur l’apparition d’une otite, mais les lapins béliers sont particulièrement touchés. En raison des restrictions anatomiques dues aux oreilles pendantes, une sténose du conduit auditif externe se produit et entraîne une accumulation de cérumen devant le tympan. Une ventilation limitée et une humidité accrue dans l’oreille favorisent l’otite externe et, le cas échéant, l’otite moyenne. Les blessures, les corps étrangers, les ectoparasites et les infections ascendantes des voies respiratoires ou des dents sont d’autres causes de l’apparition d’une otite chez le lapin.

Les symptômes

Des symptômes différents sont observés dépendant de la cause.

• Accumulation de cérumen dans l’oreille externe : le cas échéant, réduction de l’activité, moins de sursauts (grâce à l’atténuation)
• Otite externe : secouement de la tête, démangeaisons de l’oreille, modifications du pavillon de l’oreille (rougeur, chaleur, dépôts, enflure, saignements), le cas échéant diverticulose auriculaire (sous le pavillon de l’oreille), oreille tombante (chez les lapins à oreille dressée)
• Otite moyenne : le cas échéant, inclinaison de la tête, parésie faciale, syndrome de Horner
• Otite interne : symptômes susmentionnés et, le cas échéant, roulades, baisse de l’état général et de la consommation de nourriture.

Le diagnostic

L’examen de l’oreille comprend un examen clinique, une analyse cytologique et, le cas échéant, un examen bactériologique/mycologique des sécrétions auriculaires (avec établissement d’un antibiogramme). En cas de suspicion d’atteinte de l’oreille moyenne/interne, des examens d’imagerie supplémentaires (radiographie, scanner) sont nécessaires. L’exclusion d’autres infections systémiques se fait à l’aide d’un examen sanguin avec hémogramme différentiel et détermination de l’anti-corps d’Encephalitozoon cuniculi.

L’examen de l’oreille, l’analyse cytologique de l’oreille et l’examen bactériologique sont décrits plus en détail ci-dessous.

Examen clinique

L’examen de l’oreille commence par une inspection et une palpation approfondie de l’oreille externe et de son pourtour (traces de grattage, blessure, diverticules, modifications de la peau).

En cas de tête penchée, la paupière et les lèvres doivent toujours être examinées attentivement. Une parésie faciale unilatérale (contraction de la lèvre supérieure (fig. 2), fermeture réduite des paupières et/ou syndrome de Horner (myosis, ptosis, énophtalmie)) peut être le signe d’une implication de l’oreille moyenne/interne.

Le conduit auditif externe est examiné à l’aide d’un otoscope/vidéoendoscope. Sur une oreille saine, en tirant légèrement la pinna vers le haut (fig. 1), on peut généralement voir jusqu’au tympan (fig. 3). Si du matériel est présent dans le conduit auditif, il faut distinguer s’il s’agit « seulement » de cérumen congestionné (blanc en profondeur, jaunâtre vers l’ouverture) et si le conduit auditif est par ailleurs non irritant, ou s’il y a des signes d’inflammation (rougeur, gonflement, lésions, liquéfaction des sécrétions) (fig. 4) et des causes primaires possibles comme des corps étrangers et/ou des ectoparasites. L’analyse cytologique aide à faire la distinction.

Prélèvement des échantillons

Pour prélever correctement les échantillons, il faut un entonnoir d’otoscope, des écouvillons fins (avec milieu), des lames porte-objet et des lamelles couvre-objet. Le prélèvement d’échantillons dans le conduit auditif externe s’effectue en général chez le lapin non sédaté (dans l’oreille moyenne intra-opératoire). L’enveloppement de l’animal dans une serviette (« wrapping ») permet d’éviter les mouvements de défense (fig. 1).

Afin de garantir un prélèvement aussi profond que possible, l’écouvillon est glissé avec précaution à travers l’entonnoir de l’otoscope jusqu’à proximité du tympan et légèrement tourné. Il est ensuite étalé sur une ou deux lames porte-objets pour l’analyse cytologique, puis placé dans le tube de milieu correspondant pour une éventuelle culture ultérieure. Les écouvillons sont conservés à température ambiante ou au réfrigérateur pendant 24 heures (envoi sans réfrigération).

Il est toujours recommandé de prélever des échantillons dans les deux oreilles (le cas échéant, les étaler côte à côte sur une lame porte-objet) (fig. 5), même ou surtout si une seule oreille est touchée, afin d’avoir une idée du microbiome auriculaire normal du patient.

Cytologie de l’oreille

La cytologie donne des indications importantes sur la composition des sécrétions (cérumen ou pus) et sur des causes primaires éventuelles telles que des ectoparasites, des levures et/ou un nombre accru de bactéries. Pour une préparation cytologique, l’écouvillon prélevé est déroulé en fine couche sur deux lames porte-objets. Après séchage à l’air, une lame est examinée au microscope natif (condenseur en bas, diaphragme fermé, grossissement 100 – 400 fois) pour détecter les ectoparasites. La deuxième lame est colorée, par exemple avec Diff-Quick®, et est également examinée après séchage à l’air (100 – 400 fois, 1000 fois avec de l’huile, condenseur en haut, diaphragme ouvert).

L’analyse cytologique donne les premières informations sur la nature des sécrétions : cérumen non coloré (fig. 6) ou pus clairement coloré avec des stries d’ADN (restes nucléaires de granulocytes neutrophiles et de kératinocytes) et des bactéries ou des levures (fig. 7). La quantité de bactéries (cocci, bâtonnets) et de levures (Malassezia) peut également être évaluée.

Les Malassezia (Malassezia cuniculi) chez les lapins sont ronds, de taille variable, parfois en bourgeonnement et de couleur bleu intense (Fig. 8).

L’examen cytologique doit être effectué une première fois avant le début du traitement, puis lors du contrôle du traitement. Le jour du contrôle, aucun médicament ne devrait être introduit dans le conduit auditif.

Les tables rondes d’experts Laboklin, avec leurs thèmes passionnants et leurs experts brillants, jouissent d’une grande popularité. Parmi les réponses à vos questions sur le lymphome, nous avons sélectionné les plus importantes pour vous.

Les experts suivants étaient présents :
Prof. Dr Carla Rohrer Bley, diplômée ACVR (Radiation Oncology), diplômée ECVDI (Add Rad Oncol), directrice de la clinique de radio-oncologie & d’oncologie médicale de l’hôpital universitaire vétérinaire de Zurich ; Dr Heike Karpenstein-Klumpp, FTA radiologie + imagerie médicale, FTA médecine interne, Zentrum für Tiergesundheit Baden-Baden ; Dr Sandra Lapsina, diplômée ECVCP, diagnostic de laboratoire Laboklin avec focus sur l’hématologie/diagnostic des lymphomes ; Dr Jarno Schmidt, diplômé ECVIM (oncologie), FTA médecine interne petits animaux/animaux de compagnie, Master Mediation + Konfliktmanagement, IVC Evidensia Tierklinik Hofheim.

La Prof. Dr Rohrer Bley donne un aperçu introductif. Elle explique que le lymphome est une dégénérescence néoplasique des lymphocytes qui peut être généralisée ou localisée. On distingue différents types de lymphomes en fonction de leur appartenance à un organe. Chez le chien, le lymphome multicentrique généralisé affectant les ganglions lymphatiques est particulièrement fréquent. Les lymphomes médiastinaux, cutanés et intestinaux sont plus rares. Chez le chat, les lymphomes gastro-intestinaux sont particulièrement fréquents, suivis par les lymphomes des reins, du nez et du médiastin. Une autre classification importante se fait sur la base de l’origine des cellules, par exemple en lymphome à cellules B ou à cellules T.

Interrogé sur les prédispositions raciales, le Dr Schmidt explique que toutes les races peuvent être touchées. Il semble toutefois que la maladie soit proportionnellement plus fréquente chez certaines. Il existe des différences régionales à cet égard. Ainsi, aux États-Unis, le Golden Retriever est très souvent cité, alors que dans l’espace européen, ce sont plutôt les boxers, les dobermans et les bouviers bernois.

En ce qui concerne le pronostic, la Dr Lapsina sait que le type de cellules joue un rôle. Ainsi, dans le cas du lymphome multicentrique canin, le pronostic est souvent moins bon pour les lymphomes à cellules T que pour les lymphomes à cellules B. De plus, les soustypes peuvent jouer un rôle décisif. Il peut donc être utile, après confirmation du diagnostic, de procéder à une classification plus poussée du lymphome (par exemple sur la base d’un immunophénotypage par cytométrie de flux ou immunohistochimie).
Le Dr Schmidt confirme ces données et ajoute que certaines formes anatomiques ont un pronostic moins favorable (par exemple le lymphome rénal félin, le lymphome intestinal canin). Toutefois, outre les lymphomes agressifs (de haut grade), il y a aussi des lymphomes indolents ou de bas grade pour lesquels le pronostic peut être nettement meilleur (par exemple le lymphome intestinal félin à petites cellules).

Les participants souhaitent savoir quels résultats conduisent à une suspicion de lymphome. La Dr Karpenstein-Klumpp observe des ganglions lymphatiques périphériques hypertrophiés chez le chien. Elle se montre également attentive à un chien dont la rate est grande à la palpation ou à un chat présentant une rénomegalie. Chez le chat, elle effectue toujours une compression prudente du thorax crânien. La paroi thoracique, normalement très mobile chez le chat, reste rigide en présence de grandes masses médiastinales. D’autres déclencheurs pour initier une recherche de
lymphome peuvent être une perte de poids chronique, une polyurie/polydipsie (PU/PD) ou une fièvre d’origine inconnue.

La Dr Lapsina rapporte que les résultats sanguins sont généralement non spécifiques. Les modifications pour lesquelles le lymphome doit être considéré comme un diagnostic différentiel sont l’anémie non régénérative, la thrombocytopénie, la lymphocytose, l’éosinophilie, l’hypercalcémie, l’hyperglobulinémie et les concentrations élevées de protéines de phase aiguë (sérum amyloïde A chez le chat, protéine C-réactive chez le chien). La LDH occupe une place particulière. En cas de lymphome, elle peut être très élevée et même avoir une incidence sur le pronostic.

En plus, les marqueurs tumoraux peuvent être déterminés. Toutefois, comme la Dr Lapsina le souligne, ceux qui sont actuellement disponibles sont plutôt adaptés au dépistage chez les chiens cliniquement sains et au suivi de la situation. Il convient de mettre l’accent sur la thymidine kinase et les nucléosomes. La thymidine kinase est détectée en plus grande quantité en cas de prolifération cellulaire. Elle est élevée en cas de lymphome (mais aussi en cas d’inflammation). Elle est intéressante parce qu’elle peut indiquer précocement une récidive dans le lymphome multicentrique canin après/sous traitement, même avant la présence d’une lymphadénomégalie cliniquement identifiable. La détermination avant le début du traitement peut donc être utile pour le suivi ultérieur. Les nucléosomes sont retrouvés en plus grand nombre dans le sang en cas de destruction cellulaire. Une concentration élevée chez un chien cliniquement sain peut être utilisée comme premier dépistage de tumeurs. Cependant, il est important de noter que l’évaluation est difficile chez les chiens présentant de la fièvre ou d’autres symptômes cliniques, car le marqueur ne fait pas la distinction entre l’inflammation et la néoplasie.

La Dr Karpenstein-Klumpp nous donne un excellent aperçu des résultats évocateurs de l’échographie abdominale. Chez le chien atteint d’un lymphome multicentrique, elle constate souvent une rate hypertrophiée avec des zones circonscrites et hypoéchogènes et de gros ganglions lymphatiques abdominaux ronds et sans écho. En revanche, un lymphome dans le foie présente généralement moins de modifications typiques et est souvent difficile à identifier. Le lymphome rénal du chat se caractérise par une rénomegalie avec une surface souvent irrégulière et une bordure hypoéchogène. Le lymphome à grandes cellules du tractus gastro-intestinal se distingue généralement chez le chien et le chat par un épaississement de la paroi focal et très hypoéchogène
avec une perte complète de la couche. Les ganglions lymphatiques abdominaux associés sont généralement grands, ronds et hypoéchogènes. En revanche, le lymphome intestinal à petites cellules ou de faible malignité, fréquent chez le chat, ne peut pas être distingué d’une maladie intestinale inflammatoire à l’échographie. La couche musculaire de l’intestin est souvent élargie (comme dans les maladies inflammatoires) et la stratification est préservée. Les ganglions lymphatiques intestinaux sont élargis et généralement d’une échogénicité réduite, mais ils ne présentent pas l’hypoéchogénicité forte et la modification de forme.

La Dr Lapsina insiste sur le fait que l’analyse cytologique est un outil de diagnostic central pour la clarification d’un lymphome. Si la cytologie révèle une population de lymphocytes très semblables (monomorphes) et/ou si les lymphocytes présentent des atypies, il y a alors un fort soupçon de lymphome. Dans ce contexte, la Prof. Dr. Rohrer Bley recommande clairement de ne pas commencer de traitement « diagnostique » avec des glucocorticoïdes. En effet, la suite du diagnostic, notamment la cytologie, n’est généralement plus probante.

La Dr Lapsina donne de précieux conseils pour la pratique d’une ponction des ganglions lymphatiques et la réalisation d’un frottis bien interprétable. Dans la mesure du possible, la ponction doit être effectuée sans aspiration. Cela permet d’éviter une contamination excessive du sang ainsi qu’un trop grand nombre de cellules sur la lame. Le lymphome a tendance à libérer de nombreuses cellules qui se superposent sur la lame. Cela a pour conséquence que la préparation ne peut pas être évaluée de manière adéquate. Souvent, une ponction réussit bien si seule la canule est utilisée sans seringue montée. Le volume de l’aiguille doit être plutôt petit (par ex. 22 gauge). Le matériel déposé sur une lame porte-objet est étalé très soigneusement à l’aide d’une deuxième lame porte-objet. Les cellules de lymphome sont fragiles et sont rapidement détruites par la pression. Elles ne sont alors plus évaluables sous l’angle cytologique. Si plusieurs ganglions lymphatiques sont hypertrophiés, il est recommandé de choisir les ganglions précapulaires ou poplités pour la ponction. Les ganglions lymphatiques mandibulaires sont souvent affectés par des infections de la cavité buccale, ce qui peut rendre le diagnostic plus difficile. De plus, ils sont souvent confondus avec les glandes salivaires lors des prélèvements.

L’analyse cytologique peut être suivie d’une immuno-phénotypisation par cytométrie de flux ou PARR (PCR for antigen receptor rearrangement). La Dr Lapsina explique de quoi il s’agit et à quoi sert chaque méthode. La PARR est une PCR qui examine si les lymphocytes présents appartiennent à un clone commun ou s’ils ont une ascendance différente. Elle donne une réponse oui/non à la question si le matériel analysé est un lymphome et est donc utilisée en priorité lorsque l’analyse cytologique n’est pas concluante. La PARR est une méthode robuste qui peut être utilisée avec n’importe quel matériel, y compris des cellules déjà colorées sur une lame. Contrairement à l’immunophénotypage par cytométrie de flux, il ne permet pas de déterminer les soustypes. Cette dernière est un examen important pour la classification et le pronostic ultérieurs. Elle nécessite du matériel frais et liquide. Le sang et les prélèvements cellulaires « rincés » dans un mélange de NaCl à 0,9 % et de sérum de patient (rapport 50:50) peuvent être utilisés pour l’analyse. Une alternative est l’immunohistochimie par biopsie. Cette variante est la plus fiable, mais elle nécessite plus de temps et est plus invasive en ce qui concerne le prélèvement d’échantillons.

En plus, les participants sont intéressés par l’avis des experts sur le staging. Le Dr Schmidt indique que le lymphome multicentrique canin est divisé en cinq stades. La plupart des chiens atteints de lymphome multicentrique sont présentés au stade 3 (atteinte généralisée des ganglions lymphatiques périphériques) ou 4 (en plus, le foie et la rate sont également anormaux). Il est intéressant de noter qu’il n’y a pas de différence de pronostic entre les deux stades. En cas de résultats échographiques typiques (p. ex. teigne-milot), le Dr Schmidt n’insiste généralement pas à effectuer un examen cytologique de la rate et du foie. Toutefois, il recommande toujours une hématologie complète, y compris l’évaluation d’un frottis sanguin fraîchement réalisé. Si de nombreux lymphocytes de grande taille et/ou atypiques y sont présents, un stade 5 (atteinte de la moelle osseuse) est probable. Le pronostic est alors moins bon. Les substrats cliniques a) bon état général clinique et b) cliniquement malade (p. ex. vomissement, PU/PD, perte de poids) sont également importants. Le pronostic est nettement meilleur au stade a). La Prof. Rohrer Bley fait remarquer que la situation est légèrement différente chez les chats atteints de lymphome nasal. Le lymphome nasal est une maladie locale qui peut être traitée par radiothérapie. Toute implication systémique doit être exclue au préalable par un staging consciencieux (radiographie du thorax, échographie des reins et des ganglions lymphatiques abdominaux, cytologie des ganglions lymphatiques modifiés ainsi que du foie et de la rate).

La Dr Karpenstein-Klumpp peut rassurer en ce qui concerne les ponctions d’organes internes guidées par ultrasons. Ce n’est pas si difficile. La rate, en particulier, est facile à atteindre. L’idéal est de travailler avec la technique de l’aiguille à coudre (en avant et en arrière, pas en éventail) sans aspiration. Chez de nombreux patients, la ponction se fait sans complications, même sans sédation. Toutefois, la décision doit être prise sur la base d’évaluation individuelle du patient, de sa propre expertise et de l’organe à ponctionner.

Le traitement dépend du type de lymphome. La thérapie médicamenteuse est l’élément central. Certains types de lymphomes, comme le lymphome nasal du chat, peuvent être traités efficacement par radiothérapie (à condition qu’ils soient effectivement limités à la cavité nasale). Les possibilités chirurgicales sont limitées. La chirurgie peut être utilisée pour des nodules cutanés singuliers, des ganglions lymphatiques affectés isolément et pour éliminer un iléus dans le cas d’un lymphome intestinal, mais elle est toujours accompagnée d’un traitement médicamenteux. Dans le cas du lymphome rénal du chat en particulier, il faut absolument tenir compte du fait qu’il s’agit d’une maladie bilatérale. L’ablation unilatérale d’un rein n’a aucun sens.

Le Dr Schmidt conseille d’informer les propriétaires d’animaux de manière détaillée sur les effets secondaires et les risques, sans toutefois attiser des peurs inutiles. Comme le terme « chimiothérapie » suscite souvent de fausses associations, il préfère parler de « thérapie médicamenteuse contre le cancer ». Comme pronostic, il donne les horizons suivants comme règle générale pour le lymphome multicellulaire à grandes cellules du chien sous chimiothérapie : 50 % des chiens traités avec un lymphome à cellules B sont encore en vie après 12 mois, pour le lymphome à cellules T après 7 à 8 mois. Il est important de noter qu’il s’agit de valeurs statistiques. Dans certains cas, il est possible d’obtenir des durées de survie tout à fait longues, parfois même de plusieurs années. Une guérison est possible, mais rare. L’utilisation de glucocorticoïdes seuls est palliative et la moitié des chiens meurt dans les 2 à 3 mois.

Un cycle complet de chimiothérapie dure généralement 4 à 5 mois. La plupart des protocoles contiennent de la doxorubicine, de la vincristine, du cyclophosphamide et de la prednisolone (protocole dit CHOP). Pour les lymphomes à cellules T, on choisit souvent un protocole contenant de la lomustine (généralement appelé LOPP). Chez les chats, on utilise souvent uniquement la vincristine, le cyclophosphamide et la prednisolone (COP). Les substances actives sont choisies de manière à ce que les groupes de substances ayant des mécanismes d’action différents alternent afin d’obtenir un spectre d’action aussi large que possible. La doxorubicine et la vincristine doivent être administrées par voie intraveineuse, tandis que le cyclophosphamide, la lomustine et la prednisolone sont disponibles sous forme de médicaments oraux. Cependant, le partage des comprimés, souvent nécessaire, pose des problèmes car les nouvelles dispositions légales rendent difficile la mise à disposition de dosages adaptés à la médecine vétérinaire. Une simple « chimiothérapie par comprimés » est généralement moins efficace, car il manque des substances actives importantes telles que la doxorubicine et la vincristine. Le lymphome intestinal à petites cellules du chat constitue certainement une exception à cette règle.

Les effets secondaires possibles sont la perte d’appétit, le vomissement, la diarrhée et les infections secondaires dues à l’immunosuppression (leucopénie induite par la chimiothérapie). En outre, des lésions tissulaires peuvent survenir autour de l’accès veineux si le produit chimiothérapeutique n’a pas été appliqué correctement. La doxorubicine présente la particularité d’être cardiotoxique. Elle ne devrait pas être utilisée chez les patients présentant des antécédents cardiaques. De nombreux agents chimiothérapeutiques (p. ex. la vincristine, la doxorubicine) sont contre-indiqués chez les patients présentant un défaut MDR1.

En ce qui concerne l’exécution, la sécurité du personnel manipulant les produits chimiothérapeutiques doit être garantie. Les produits chimiothérapeutiques ne peuvent être préparés pour l’application que sur un établi spécial équipé d’une hotte. Alternativement, ils peuvent être commandés dans certaines pharmacies qui les livrent dans un système fermé. Il est important d’informer le personnel et les propriétaires d’animaux sur la manière de traiter les produits chimiothérapeutiques. Les substances peuvent être éliminées par l’urine, les fèces et la salive. On ne sait toutefois pas dans quelle mesure cela présente un risque pour la santé des personnes et des animaux en contact. Une attention particulière est accordée aux femmes enceintes et aux jeunes enfants. Les échantillons de sang prélevés peu après une chimiothérapie doivent être traités avec précaution.

La Prof.Dr Rohrer Bley explique qu’une des particularités du lymphome est sa radiosensibilité. Mais en raison de son apparition souvent généralisée et/ou de sa localisation intrathoracique ou intra-abdominale, la radiothérapie n’est souvent pas réalisable de manière judicieuse. De bons résultats sont obtenus lors de l’irradiation du lymphome nasal du chat. Un protocole classique comprend 10 séances d’irradiation sur une période de deux semaines. L’amélioration clinique est très rapide avec des durées de survie moyennes autour de 2 à 3 ans. Il faut toutefois s’attendre à ce qu’un tiers des patients développent ultérieurement une maladie systémique.

Un autre domaine d’application de la radiothérapie est le lymphome cutané, tant que les lésions cutanées solitaires sont détectées suffisamment tôt, avant qu’elles ne se soient propagées sur une grande surface, et/ou qu’elles soient limitées à la cavité buccale.

En ce qui concerne le monitoring, la Prof. Dr Rohrer Bley rapporte qu’elle y renonce dans la mesure du possible. Elle sensibilise plutôt ses clients aux symptômes possibles, de sorte que les patients soient présentés rapidement dès qu’une nouvelle progression apparaît. Le Dr Schmidt recommande de peser régulièrement les chats et de les présenter pour un examen en cas de perte de poids significative. La Dr Karpenstein-Klumpp répond volontiers aux besoins des propriétaires d’animaux. Beaucoup d’entre eux souhaitent une visite régulière chez le vétérinaire et certains souhaitent également que leurs animaux soient examinés par échographie. Le Dr Schmidt confirme également ce souhait des propriétaires d’animaux. La Dr Lapsina rappelle l’utilité potentielle des marqueurs tumoraux mineurs (par exemple, l’hyperglobulinémie, l’hypercalcémie, la LDH) et majeurs (par exemple, la thymidine kinase) dans ce contexte.

Dr. Jennifer von Luckner

La phase dite de transit est la période allant d’environ trois semaines ante partum à environ trois semaines post partum chez les vaches. Cette période représente une phase très critique dans le déroulement de la lactation d’une vache laitière. C’est ici que les bases de la lactation suivante sont posées. Les vaches qui surmontent bien cette phase présentent une production laitière plus élevée, une meilleure fertilité et une longévité accrue.

Le vêlage et le passage du tarissement à la lactation fraîche exposent la vache à d’importants changements hormonaux, physiologiques et métaboliques, ce qui peut avoir un impact durable tant sur la santé des animaux que sur la production laitière.

En raison de la diminution de l’ingestion de matière sèche au tarissement, de l’augmentation des besoins du foetus et du début de la lactation, la vache entre dans une phase de bilan énergétique négatif. Pour que cette période soit la plus courte possible, il faut calculer une ration de tarissement adaptée et appétente et garantir une ingestion optimale de la ration grâce à une gestion cohérente de l’alimentation et à une quantité suffisante d’eau d’abreuvement (des abreuvoirs à auge plutôt que des petits abreuvoirs automatiques !).

La condition préalable à un apport adéquat en minéraux pour la prophylaxie de la fièvre de lait (généralement provoquée par une hypocalcémie) est également une bonne ingestion de fourrage ainsi qu’une ration équilibrée selon le Dietary-Cation-Anion-Balance (DCAB). En outre, il convient de prévoir des substitutions de calcium et de phosphore chez les animaux à risque ou pendant les périodes à risque.

De plus, le changement hormonal et le stress du vêlage pèsent sur le système immunitaire de la vache, ce qui augmente le risque de maladies infectieuses chez les vaches fraîchement vêlées.

Avec l’aide de rations optimisées, d’une consommation d’aliments assurée et d’une gestion systématique de la santé avec des contrôles ciblés, nous pouvons bien accompagner les vaches pendant la phase de transit.

De quelle manière le diagnostic clinique de labora-toire peut-il être utile à cet égard ?

Les examens cliniques de laboratoire doivent notamment répondre aux questions suivantes :

1. Est-ce que les animaux consomment suffisamment de nourriture et est-ce que la ration couvre les besoins énergétiques ?
2. Est-ce que l’apport en minéraux est correct en ce qui concerne la fièvre de lait clinique et subclinique ?
3. Quel est le statut immunitaire des animaux ?

Les paramètres qui donnent des informations sur la consommation d’aliments, la situation métabolique et le statut immunitaire des animaux sont présentés dans le tableau suivant (Tab. 1) :

Tab. 1 : Aperçu des paramètres métaboliques significatifs pendant la phase de transit

La détermination des minéraux du sang et de l’urine, en particulier du calcium, mais aussi du phosphate et du magnésium, est essentielle pour le diagnostic de la fièvre de lait clinique (immobilité) et subclinique (faiblesse des contractions, comportement après la mise bas, déplacement de la caillette). D’autres éléments quantitatifs comme le potassium, le sodium et le chlorure peuvent aider à l’analyse de l’approvisionnement et donc au calcul de la ration et à l’ajustement d’un DCAB dans la ration d’alimentation.

Pour se faire une idée de l’état immunitaire d’une vache, les paramètres clinico-chimiques tels que la protéine totale, l’albumine, les globulines, l’hémogramme et les protéines de la phase aiguë sont utiles.

Une augmentation des protéines totales et des globulines n’est visible qu’après quelques jours lors d’un événement inflammatoire. Il en va de même pour les modifications de l’hémogramme telles que l’augmentation du nombre total de leucocytes ou le déplacement des fractions leucocytaires, surtout la neutrophilie. Les protéines dites de phase aiguë indiquent une inflammation de manière plus sensible et plus spécifique.

L’albumine est une protéine de phase aiguë négative, car dans la réaction de phase aiguë, la capacité de synthèse du foie est déplacée en faveur des transporteurs, des médiateurs, des modulateurs et des inhibiteurs ce qui entraîne une diminution de la concentration d’albumine. Les protéines majeures de la phase aiguë chez les bovins sont l’haptoglobine et le sérum amyloïde A (SAA). Une augmentation de ces protéines dans le sang indique des processus inflammatoires à un stade précoce et convient naturellement aussi au diagnostic d’inflammations subcliniques. La SAA augmente plus rapidement que l’haptoglobine, qui reste élevée plus longtemps.

En cas de questions supplémentaires et d’exigences particulières dans les différentes exploitations, un screening avec les points principaux d’analyse présentés peut être complété selon les besoins, par exemple par l’évaluation des données de production laitière, des analyses de fourrage, la mesure de l’épaisseur de la graisse dorsale, des analyses d’oligo-éléments et le diagnostic de charges acidotiques ou alcalotiques par la mesure de NSBA dans les urines

Encore quelques mots sur la préanalytique :

Car celle-ci est rarement optimale dans la pratique automobile.
Comment pouvez-vous améliorer la préanalytique ? Lors de la planification des visites de troupeaux au cours desquelles vous souhaitez prélever des échantillons sur plusieurs animaux, planifiez les tours de manière à ce que les échantillons puissent être traités le plus rapidement possible dans le cabinet.

Stockez les échantillons de sang dans la voiture, à l’arrêt, au frais en été et à l’abri du gel en hiver.

Le sérum convient à la plupart des examens de chimie clinique. Pour réaliser un hémogramme, il faut du sang EDTA. Pour obtenir du sérum, prélevez le sang directement dans le tube à sérum et laissez-le coaguler à température ambiante pendant 20 à 30 minutes.

Il faut ensuite le centrifuger dès que possible, puis pipetter et séparer le surnageant. Versez le sérum dans un tube neutre. Le sérum séparé peut être réfrigéré ou congelé. Prélevez également du sang EDTA directement dans un tube EDTA, de préférence après l’échantillon de sérum. Lors du prélèvement de sang, les premiers jets de sang contiennent davantage de facteurs de coagulation, ce qui augmente le risque que le sang EDTA coagulée. Agitez doucement le tube EDTA à plusieurs fois. Le sang EDTA peut être réfrigéré, mais en aucun cas congelé. Évitez absolument toute contamination du sérum par l’EDTA (par ex. en inversant les couvercles), car cela entraîne des déplacements notables des électrolytes.

Une bonne préanalytique contribue à éviter l’hémolyse. Celle-ci peut notamment fausser l’analyse des minéraux.

Résumé

Un bon monitoring pendant la phase de transit contribue à la santé des animaux de manière essentielle et a un effet positif sur la production de lait.

Dr. Anna-Linda Golob, Swanhild Wagenfeld

Game de prestations autour de la phase de transit

• Bilan de transit (+ hémogramme)
• Bilan de transit + haptoglobine (+ hémogramme)
• Bilan de transit + NSBA (+ hémogramme)
• Sérum amyloïde A